Жоржина

Жоржини часто заражаються вірусом жоржин-мозаїки (DMV), сферичним вірусом dsDNA, який здебільшого індукує візерунки листя хлоротичного дуба та інші симптоми хлоротику і може спричинити затримку розвитку сприйнятливих сортів.

Пов’язані терміни:

Віроїд
Поспівіроїд
Меристема
Хризантема
Рід
Hop Stunt Viroid
Помідор
Цикорій
Картопля
Гвоздика

Завантажити у форматі PDF

Про цю сторінку

Dahlia Latent Viroid

Jacobus Th.J. Верховен,. Педро Серра, у Viroids and Satellites, 2017

Симптоми, діапазон проживання та економічне значення

Жоржина - єдина відома рослина-хазяїн DLVd. Однак як у природних, так і в штучно заражених рослин симптомів не спостерігається. Більше того, агроінокуляція та механічне інокуляція соку не змогли передати віроїд хризантемі, картоплі, помідору або нікотіані бентаміані, що свідчить про те, що він має вузький діапазон хазяїна (Verhoeven et al., 2013). Крім того, Цусіма та ін. (2015) не вдалося передати DLVd Chrysanthemum pacificum, Tithonia rotundifolia, Helianthus annuus та Glebionis коронарних, а коінокуляції DLVd та PSTVd жоржинам та дикому хмелю (Humulus lupulus var. Cordifolius) були успішними лише для жоржин. Тому економічне значення DLVd низьке.

Неперетравлювані фруктани як пребіотики

8.2.1.8 Ками, кульбаба, жоржини та якуни

Розробка та модифікація біоактивності

Øyvind M. Andersen, Monica Jordheim, in Comprehensive Natural Products II, 2010

3.16.4.2.1 Мономери халкону та аурону

Мікророзмноження

11.2.1 Культура меристем

Культуру меристеми використовують для відростка верхівкової культури меристемної культури in vitro. Культура меристеми була розроблена Морелем та Мартіном у 1952 р. Для річок, що виводяться з Далії [5]. Орхідея Цимбідій була мікророзмножена за допомогою культури меристем Морелем в 1965 р. [6]. У культурі меристеми росте вже існуюча меристема пагонів, і з цих пагонів відроджуються додаткові корені. У кінчику пагона за наймолодшим листом лежить первісна меристема. Він має довжину до 250 мм і діаметр 100 мм. На додаток до апікальної меристеми, один-три листкові зачатки були б у верхівці пагона 100–500 нм. Коли метою є елімінація вірусів, для отримання рослин, що не хворіють, використовуються кінчики пагонів до 10 мм. Для швидкого розмноження клонів дотримуються культури пагонів, у яких використовують експланти (5–10 мм). Отже, більшість меристемних культур є, по суті, культурами кінчиків пагонів. Вузлові експланти різного розміру також використовуються для швидкого розмноження клонів [7] .

Розмір кінчика пагона, який використовується для культури, не важливий, коли основною метою є мікророзмноження. Але коли метою є отримання безвірусного запасу (або запасу, вільного від інших патогенних мікроорганізмів), для висічення апікальної меристеми необхідно зробити мінімум навколишньої тканини. Кінець пагона можна нарізати на дрібні шматки, щоб отримати більше одного саджанця з кожного кінчика пагона. Шматочки сиру (суцвіття) використовуються в деяких видах, таких як цвітна капуста. Кінцівки відростків або шматочки тканин, що мають бруньки таких стебел, можна використовувати для рослин, що мають підземний стебло. Пояснення, взяті з активно зростаючих рослин на початку вегетації, є найбільш підходящими [8] .

Потім пояснення меристеми розміщують на середовищі Мурасіге та Скуга (МС), яке вважається ефективним середовищем для більшості видів. Менша концентрація солі підходить для деяких видів. Фунгіциди (бавістин) або антибіотики (левоміцетин/стрептоміцин) можна додавати в середовище під час росту, щоб усунути ендофітне забруднення. Подібним чином культура меристем виконує кроки, подібні мікророзмноженню: (i) ініціювання культури, (ii) розмноження пагонів, (iii) вкорінення розвинених пагонів та (iv) перенесення розсади в горщики або грунт [9] .

Культура тканин рослин

2.2.1.2.1 Культура меристем

Вирощування верхівкової верхівкової меристеми in vitro відоме як культура меристем. Культура меристеми була розроблена Морелем та Мартіном у 1952 р. Для ліквідації річок із жоржин. Морель в 1965 р. Використовував меристемну культуру для мікророзмноження орхідеї цимбідіум. Меристема лежить у кінчику пагона за наймолодшим листом або першим листком зачатків [75]. Культура крайньої верхівки пагона використовується як техніка для звільнення рослин від вірусних інфекцій. Екстракти розсікають або на верхівкових, або на бічних бруньках. Вони складаються з дуже маленької верхівки стебла, що складається лише з верхівкової меристеми та однієї або двох листових зачатків [76,77]. Меристема лежить у кінчику пагона і має розміри приблизно 100 мм у діаметрі та 250 мм у довжину. Зазвичай використовуються наконечники відростків до 10 мм, коли метою є елімінація вірусу (або інше патогенне зараження організмом). У таких випадках важливо, щоб верхівкова меристема була вирізана з мінімумом навколишньої тканини.

Природні продукти Структурна різноманітність-I Вторинні метаболіти: організація та біосинтез

Шін-ічі Аябе,. Томойосі Акаші, у "Комплексних природних продуктах II", 2010 р

1.24.3.1.2 (iii) Глікозилювання хальконів

Багатофункціональна (ізо) флавоноїдна глікозилтрансфераза, MtUGT85H2, була охарактеризована із трубопроводу Medicago. 80 MtUGT85H2 виявляв активність щодо флавонолів, ізофлавонів та халкону ізоліквіритигеніну ( 40 ). Фермент продукував єдиний продукт з 40; однак положення глікозилювання не було визначено. Каталітична ефективність для 40 була в 4,9 рази нижче, ніж для флавонолу (кемпферол: для М. truncatula GT, див. також Розділ 1.24.3.5.1 (v) (a)).

Географічне поширення вірусоїдів у Європі

Франческо Фаджолі,. Вісенте Паллас, у Viroids and Satellites, 2017

Поспівіроїди на декоративних та трав'янистих культурах

Поспівіроїди були зареєстровані у всьому світі, включаючи Європу, де ніколи не повідомлялося про лише мексиканські віруси папіта і томат планта мачо (зараз вважаються єдиним видом). У цьому розділі розглядається також прихований вірус жоржин, який насправді належить до роду Hostuviroid (Di Serio et al., 2014).

Картопляно-веретеноподібний клубень (PSTVd) - карантинний шкідник, виявлений у насінні та бульбах картоплі в деяких країнах Східної Європи (Білорусь, Росія та Україна; EPPO/CABI, 1997). Він також був виявлений у Сполученому Королівстві та вилучений із картопляних збірок у колекції картоплі Співдружності (Шотландська станція розведення рослин, 1976). Спорадичні спалахи PSTVd у томатах були зареєстровані в Бельгії, Італії, Нідерландах та Великобританії (Mumford et al., 2004; Navarro et al., 2009; Verhoeven et al., 2004, 2007). Крім того, у багатьох європейських країнах PSTVd-інфекції виявлені у кількох декоративних рослин: Brugmansia spp., Chrysanthemum spp., Petunia spp., Physalis peruviana, Solanum pseudocapsicum, Streptosolen jamesonii, Calibrachoa spp., Lycianthes rantonnetip. (Панель EFSA з питань охорони здоров'я рослин, 2011 р.) Та Cestrum spp. (Луїджі та ін., 2011).

Каскадерний віроїд хризантеми, як і PSTVd, є карантинним шкідником, про який повідомляли в декількох європейських країнах (Австрія, Фінляндія, Латвія, Словенія та Іспанія, де він зараз викорінений), головним чином на Dendranthema spp. але також і в інших декоративних рослинах. В даний час він присутній, з обмеженим розповсюдженням, у Бельгії, Чехії, Франції, Італії, Нідерландах, Німеччині та Великобританії у різних хазяїв: хризантема, Argyranthemum frutescens, Pericallis hybrida, Vinca spp., Petunia spp., Callibrachoa spp. ., та S. jasminoides (Панель EFSA з питань охорони рослин, 2012).

Томатний апікальний трюковий віроїд виявлений в Австрії, Бельгії, Хорватії, Чехії, Франції, Німеччині, Італії, Фінляндії, Нідерландах, Польщі та Словенії, переважно у безсимптомних декоративних рослин (Brugmansia spp., S. jasminoides, L. rantonnetii, Cestrum spp., S. jamesonii), а також у помідорах (Франція, Італія та Нідерланди; нині знищено) (Панель EFSA з питань охорони рослин, 2011).

CEVd, крім цитрусових та виноградної лози, вражає деякі декоративні та трав'яні культури. В Європі CEVd широко поширений у S. jasminoides, тоді як його епізодично ідентифікували у Brassica napus, Cestrum spp., Citrus spp., Daucus carota, Vicia faba, L. rantonnetii, помідори, баклажани та Verbena spp. в Австрії, Бельгії, Чехії, Німеччині, Італії, Чорногорії, Нідерландах, Росії, Сербії та Словенії (Панель EFSA з питань охорони рослин, 2011).

Латентний віроїд Columnea був виявлений у безсимптомної Brunfelsia undulata, вирощеної в Німеччині (Spieker, 1996a), а потім у томатах у Нідерландах, Бельгія (Verhoeven et al., 2004), Франції (Steyer et al., 2010), Великобританія ( Nixon et al., 2010) та Італії (Parrella et al., 2010). У 2010 році цей віроїд також був зареєстрований у Данії на Gloxinia spp. (Нільсен і Ніколайзен, 2010).

Помідоровий хлоротичний карликовий віроїд був зареєстрований на симптоматичних рослинах томатів у Нідерландах (Verhoeven et al., 2004), Франції (Candresse et al., 2010), а нещодавно і в Норвегії (Fox et al., 2013). Цей віроїд також повідомлявся про безсимптомну P. hybrida у Великобританії (James et al., 2008), Словенії (Marn Viršček and Pleško Mavrič, 2010) та Фінляндії (Lemmetty et al., 2011), а також у Бельгія, Чеська Республіка, Німеччина та Португалія (Панель EFSA з питань охорони рослин, 2011).

Фруктовий віроїд з перцевого чату був ідентифікований у Нідерландах у тепличному солодкому перці (Capsicum annuum L.), що свідчить про зменшення розміру плодів до 50% (Verhoeven et al., 2009).

Повідомлялося про ірезину viroid 1 у Німеччині у безсимптомної Iresine herbstii (Spieker, 1996b), у Celosia plumosa у Нідерландах (Verhoeven et al., 2010), Portulaca spp. у Словенії (Marn Viršček and Pleško Mavrič, 2012), а також у Portulaca spp., C. plumosa та C. cristata в Італії (Sorrentino et al., 2015).

Полікетиди та інші вторинні метаболіти, включаючи жирні кислоти та їх похідні

1.26.5.2.2. (I) Біохімія

Жовтий кольоровий колір кількох сортів декоративних рослин базується на наявності 6'-гідроксихалконів (типу флороглюцинолу, наприклад, у Antirrhinum majus, Helichrysum bracteatum) або 6'-дезоксихалконів (типу резорцину, наприклад, у Dahlia variabilis, Coreopsis grandiflora та інші види айстрових) з гідроксильованим B-кільцем. Результати досліджень метаболітів на Antirrhinum і Helichrysum показали, що структура 3 ', 4'- або 3', 4 ', 5'-5-гідроксилювання ауронів та відповідних гідроксильованих халконів не корелює з картиною гідроксилювання B-кільця флавоноїдів одночасно присутній. Таким чином, F3′H та F3′5′H, які регулюють гідроксилювання кільця флавоноїдів B-кільця, найімовірніше, не беруть участі в гідроксилюванні B-кільця халкону/аурону в цих рослинах. 21

Вперше гідроксилювання халкону in vitro у положенні 3 (рис. 2, Е) було вперше продемонстровано за допомогою мікросомних фракцій, приготовлених із квітів Dahlia variabilis та Coreopsis grandiflora. 240 Фермент каталізує гідроксилювання 6'-дезоксихалкону (27) до (28). Для реакції потрібні НАДФН та молекулярний кисень. Пригнічення активності ферментів спостерігали за допомогою НАДФ +, цитохрому с та типових інгібіторів цитохрому Р450, таких як тетциклацис та кетоконазол. Ці результати вказують на те, що 3-гідроксилаза халкону також належить до групи монооксигеназ із змішаною функцією цитохрому P450, як це вже було продемонстровано для флавоноїдних гідроксилаз B-кільця F3′H та F3′5′H. Мікросомальні препарати квіток Matthiola incana та Dianthus caryophyllus, що містять активність F3′H, не гідроксилювали (27) до (28), що вказує на те, що активність ферменту гідроксилюючого халкону в екстрактах квітів жоржин та кореопсису може бути ферментом, окремим від F3′H. Тому фермент був попередньо названий халкон-3-гідроксилазою.

Адъювант Advax

Дельта інулін фону

Малюнок 10.1. Будова дельта-інуліну. Схема одного ланцюга інулінового полімеру, що складається з безлічі одиниць фруктози з кінцевою глюкозою (А). Поодинока частинка дельта-інуліну, отримана за допомогою скануючої електронної мікроскопії замороженого руйнування (B). Флуоресцентно-мічені частинки дельта-інуліну, ендоцитозовані моноцитами людини після спільної культури протягом ночі (C).

Хризантема трюковий віроїд

Пітер Палукайтіс, у Віроїди та супутники, 2017

Діапазон хостів

Основним господарем CSVd є хризантема, хоча віроїд був знайдений природним чином у Ageratum spp. (GenBank Accession No. Z68201), Argyranthemum frutescens (Marais et al., 2011; Menzel and Maiss, 2000; Torchetti et al., 2012), Dahlia spp. (Nakashima et al., 2007), Petunia hybrida (Verhoeven et al., 1998), Solanum jasminoides (Verhoeven et al., 2006), Vinca major (Nie et al., 2005), а також у наступних диких хризантемах види: C. crassum, C. indicum, C. japonense, C. makinoi, C. wakasaense, C. weyrichii, C. yoshinaganthum та C. zawadskii (Matsushita et al., 2007).