Вплив морквяного соку, добавки β-каротину на пошкодження ДНК лімфоцитів, антиоксидантні ферменти еритроцитів та ліпідні профілі плазми у корейських курців

Хе-Джин Лі

1 Департамент харчування та харчування, Коледж наук про життя та нанотехнологій, кампус долини Daedeok, Університет Ханнам, 461-6 Jeonmin-dong, Yuseong-gu, Daejeon 305-811, Корея.

вплив

Парк Ю Кьон

2 Департамент медичного харчування, Вища школа медичних наук Схід-Захід, Університет Кюн Хі, Кьонгі 446-791, Корея.

3 Науково-дослідний інститут медичного харчування, Університет Кюн Хі, Сеул, 130-791, Корея.

Мун Хі Канг

1 Департамент харчування та харчування, Коледж наук про життя та нанотехнологій, кампус долини Daedeok, Університет Ханнам, 461-6 Jeonmin-dong, Yuseong-gu, Daejeon 305-811, Корея.

Анотація

Вступ

Нещодавно були проведені дослідження впливу антиоксидантної їжі та здорової функціональної їжі на профілактику та лікування різних хронічних захворювань. Повідомляється, що такі речовини мають антиоксидантну функцію та нормалізують порушену антиоксидантну систему внаслідок окисного стресу, спричиненого вільними радикалами. Зокрема, куріння викликає ненормальне збільшення вільних радикалів, що спричиняє сильне окислення в організмі і пошкоджує ліпіди, білки або навіть клітини. Отже, стан антиоксидантного харчування є вирішальним для курців, і вкрай важливо споживати достатню кількість антиоксидантних поживних речовин для постійної нейтралізації вільних радикалів.

Коли окислювальні пошкодження відбуваються постійно, це спричинює пошкодження ДНК у клітинах, що підвищує ризик таких захворювань, як старіння або рак [1,2]. Отже, слід провести дослідження впливу добавок антиоксидантної їжі на стан антиоксидантного харчування курця. Нещодавно Riso et al. [3] повідомляв, що окислені пурини у курців значно зменшились до рівня некурящих, коли додавали брокколі. Ван та співавт. [4] також повідомляв, що рівень радикалу в сироватці крові значно зменшився, коли курці вживали сік ноні протягом 30 днів. Також було показано, що споживання 250 г брокколі молодими курцями протягом 10 днів захищає від пошкодження ДНК [5]. На відміну від цього, попереднє дослідження [6] повідомляло, що добавки змішаних овочів та фруктів не впливали на зменшення пошкодження ДНК.

Таким чином, це дослідження було проведено для порівняння ефектів антиоксидантних вітамінних та овочевих добавок, шляхом вимірювання рівня пошкодження ДНК лімфоцитів та стану антиоксидантного харчування до і після прийому добавок з овочами, що містять β-каротин або однакову кількість вітаміну у курців з великим ураженням ДНК. більше 8 тижнів.

Предмети та методи

Предмети

Дієтичні вимірювання

Дієтичну оцінку проводили за допомогою співбесіди 1: 1, використовуючи 24-годинний метод відкликання до (0 тижнів) та після (8 тижнів) добавок морквяного соку та β-каротину. Співбесіду проводив департамент харчування та харчування. Щоб допомогти згадати кількість спожитої їжі, під час опитування для всіх типів їжі були представлені модель їжі та приблизна кількість їжі, переглянутої на фото. Загальне споживання поживних речовин було оцінено за допомогою програми CAN 2.0 (Інформаційний центр з питань харчування, Корейське товариство з харчування).

Для опитування вмісту флавоноїдів та каротиноїдів, споживаних суб'єктами протягом 1 місяця, використовували опитувальник частоти їжі. База даних про вміст флавоноїдів та каротиноїдів у продуктах харчування посилалася на вміст ізофлавонів у продуктах харчування [11], опублікованих Університетом штату Айова/США, США, базу даних ізофлавонів [12] Кореї Кім та Юн та флавоноїди вміст на їжу, про який повідомляли попередні дослідження Hertog et al. [13-15] та Білик та співавт. [16,17]. Опитувальник для напівкількісного опитування частоти харчових добавок [18], розроблений цією лабораторією в 2001 році, був розданий 50 курцям. Середня кількість флавоноїдів та каротиноїдів, яку приймали суб’єкти щодня, обчислювали за допомогою бази даних про вміст флавоноїдів у кожній їжі після обчислення середньодобової кількості їжі на особу шляхом множення одноразової кількості годування та частоти годування для кожного суб’єкта обстеження.

Морквяний сік та антиоксидантні вітамінні добавки

Таблиця 1

Вміст поживних речовин у морквяному соку

Аналіз крові

Кров брали у суб'єктів до (0 тижнів) та через 8 тижнів після прийому морквяного соку, β-каротину та плацебо. Цілі зразки крові, відібрані у обстежених після голодування, поміщали в гепариновану стерильну пробірку об'ємом 10 мл (Becton Dickinson Co.) і доставляли в лабораторію. Частину цільної крові поміщали окремо для аналізу Комети для вимірювання пошкодження ДНК. Залишилася кров центрифугували при 1000 об/хв протягом 15 хвилин для збору PRP (плазми, багатої тромбоцитами) зверху для аналізу на вітамін С, потім її знову центрифугували при 3000 об/хв протягом 30 хвилин для збору PDP (плазми з дефіцитом тромбоцитів) для відділення плазми крові. Плазму крові розділяли для кожного елемента аналізу і витримували при -80 ℃ у морозильній камері до використання. Еритроцити центрифугували 3 рази фізіологічним розчином, забуференним ізоосмотичним фосфатом (рН 7,4), протягом 10 хвилин при 3000 об/хв. Суспензію еритроцитів та плазму розподіляли для кожного аналізу та витримували при -80 ℃ у морозильній камері до використання.

Визначення пошкодження ДНК методом лужної комети

Визначення антиоксидантних ферментів

Аналіз каталази, глутатіонпероксидази (GSH-Px) та супероксиддисмутази (SOD) в еритроцитах проводили наступним чином. Після обробки еритроцитів пероксидом водню вимірювали кількість відновленої пероксиду водню при 240 нм протягом 30 секунд за допомогою спектрофотометра UV/VIS [21]. GSH-Px каталізує реакцію окислення глутатіону пероксидом (t-бутигідропероксидом). При подальшій реакції окислений глутатіон відновлюється до глутатіону в присутності глутатіонредуктази та НАДФН. Глутатіонпероксидазу аналізували шляхом вимірювання зниженої концентрації НАДФН після відновлення при 340 нм протягом 90 секунд за допомогою спектрофотометра УФ/ВІС [22]. Для СОД додавали етанол і хлороформ після того, як суспензію еритроцитів гемолізували дистильованою водою, яку центрифугували при 3000 ОД/хв протягом 2 хвилин. Пірогалол додавали до розчинів різної концентрації і вимірювали при 320 нм протягом 180 секунд за допомогою спектрофотометра UV/VIS [23].

Визначення ліпідних профілів плазми

Вміст ліпідів у плазмі, загальний вміст холестерину та тригліцеридів аналізували за допомогою фотометричного автоматичного аналізатора (ERBA CHEM-PRO) із плазми, яку витримували в морозильній камері -80 ℃. Зразки інкубували з 1 мл розчину ферменту, що міститься в наборі (Somang Pharmaceutical Co., Ltd.), і реагували протягом 5 хвилин на водяній бані з постійною температурою. HDL-холестерин аналізували за допомогою фотометричного автоматичного аналізатора (ERBA CHEM-PRO). У цих експериментах 0,2 мл плазми крові змішували з 0,2 мл реагенту для осадження, інкубували при кімнатній температурі протягом 5 хвилин, центрифугуючи протягом 10 хвилин, змішували з 0,1 мл верхнього розчину 0,1 мл і 3 мл розчину ферменту, і реагували протягом 5 хвилин на водяній бані з постійною температурою при 37 ℃. LDL-холестерин розраховували за допомогою рівняння Фрідевальда [24].

Статистичний аналіз

Всі дані були введені в систему баз даних excel MS, а статистичні завдання виконувались за допомогою пакету статистики SPSS-PC + (версія 17.0). Середню та стандартну помилку (SE) отримували для кожного елемента, потім середню різницю між 3 групами перевіряв Дункан після одностороннього ANOVA, а статистичну значимість оцінювали на рівні α = 0,05. Значимість середнього порівняння до та через 8 тижнів після кожного вживання морквяного соку, антиоксидантного вітаміну та плацебо перевіряли за допомогою парного t-тесту. Також були проведені тести хі-квадрат проти частоти куріння та вживання алкоголю.

Результати

Загальна характеристика предметів

У таблиці 2 наведено результати обстеження загальних характеристик та звичок у житті, включаючи куріння та вимірювання тіла (зріст, вага, ІМТ, ВЗВ та відсоток жиру в організмі). Середній вік випробовуваних становив 36,5, що суттєво не відрізнялося серед кожної групи. Крім того, не було значної різниці у зрості, вазі, ІМТ, WHR та ступені ожиріння, яка вимірювалася на основі відсотка жиру в організмі. Середня звичка куріння на добу становила 16,4 ± 1,2 у групі морквяного соку, 19,0 ± 2,3 у групі β-каротину та 16,5 ± 2,6 у групі плацебо. Крім того, середній період куріння (виражений у роках упаковки) для групи морквяного соку, групи β-каротину та групи плацебо становив 17,2 ± 2,4 року, 14,74 ± 1,9 року та 15,3 ± 2,6 року відповідно. Рік упаковки, розрахований на основі 1 пачки (20 сигарет) протягом 1 року, враховуючи кількість куріння та період куріння, становив 15,02 ± 2,1 для групи морквяного соку, 16,18 ± 4,1 року для групи β-каротину та 14,62 ± 4,35 року для групи плацебо (таблиця 2). Відсоток пацієнтів, які вживали алкоголь, становив 98%, а споживання алкоголю становило 35,8 ± 6,2 мл/день у групі морквяного соку, 23,8 ± 5,3 мл/день у групі β-каротину та 42,1 ± 13,5 мл/день у група плацебо (таблиця 2). В опитуванні фізичних вправ 56,25% (n = 27) регулярно займалися фізичними вправами 1

2 рази на тиждень і 43,75% (n = 21) виконували рідко. Час фізичних вправ 18,81 хв./День для групи морквяного соку, 18,21 хв. Для групи β-каротину та 19,90 хв./День для групи плацебо (табл. 2). До і через 8 тижнів після експерименту не було суттєвих відмінностей у вазі, ІМТ, WHR тощо у всіх групах. Діастолічний та систолічний артеріальний тиск також не виявляв суттєвих відмінностей після втручання.

Таблиця 2

Антропометричні показники, звички куріння та пиття випробовуваних