Організм харчування

Пов’язані терміни:

Паразит
Лімнологія
Ракоподібні
Амфіпода
Gammaridae
Гаммарус
Гіалелла ацтека
Gammarus Pulex

Завантажити у форматі PDF

Про цю сторінку

Аквакультура, прісноводні ☆

Клітки та сітчасті ручки

Природних харчових організмів у клітках та сітчастих загонах не вистачає, а виготовлені корми застосовуються для посилення виробництва. Розчинні та суспендовані відходи змиваються з культурних установок шляхом руху води. Більші частинки відходів осідають під клітками або поблизу них, а також на дні, закритому загонами.

Щільність риби в клітках може досягати 80–100 кг м 3, коли рух води є достатнім для заповнення розчиненого кисню, який використовується для дихання риб, і вимивання аміаку та інших відходів. Щільність риби, схожа на щільність клітин, можливо, була б допустимою в загонах на місцях з швидким водообміном, але загони зазвичай працюють при меншій щільності.

Низька концентрація розчиненого кисню у водоймищах, що містять клітки та чисті загони, може спричинити загибель риби. Поширеною причиною виснаження кисню в озерах і водосховищах є раптова термічна дестратифікація внаслідок сильних дощів, сильного вітру, прохолодної погоди або поєднання цих факторів. Культура риби часто сприяє цим подіям, оскільки поживні речовини, що надходять з відходів живлення, стимулюють ріст фітопланктону, сприяючи сильній термічній стратифікації, а відходи, що осідають у глибшій воді, сприяють виснаженню кисню в нижній товщі. Кількість культури клітини та сітчастого загону у водних об’єктах має бути обмежена, щоб уникнути надмірної евтрофікації та періодичного виснаження розчиненого кисню.

Ідентифікація генетично модифікованих організмів

29.5.2.3 Кількісна кінцева точка ПЛР

Важливим аспектом аналізу харчових продуктів з ГМО є кількісне визначення, оскільки максимальні межі ГМО в продуктах харчування є основою для маркування в таких країнах, як ЄС, а швидке збільшення кількості ГМО продуктів на ринку вимагає розробки більш досконалих систем багатовизначення (Schreiber, 1999). Тому були розроблені адекватні кількісні методи виявлення ПЛР. Кількісний конкурентний (QC) -PCR вперше був застосований для визначення промотору 35S у RR та MM у Швейцарії, як описано Studer та його колегами (1998). У цьому методі внутрішній стандарт ДНК поєднувався з цільовою ДНК (Hübner et al., 1999). Стандарт був побудований з використанням лінеаризованих плазмід, що містять модифікований амплікон ПЛР, який являв собою внутрішню вставку з делецією 21 або 22 bp у випадку ДНК RR та ММ відповідно. QC-PCR складається з чотирьох етапів:

Спільне посилення стандартної та цільової ДНК в одній реакційній трубці

Поділ продуктів відповідним способом, таким як електрофорез у агарозному гелі та фарбування гелю бромідом етидію

Аналіз гелю денситометрично

Визначення відносної кількості цільової та стандартної ДНК за допомогою регресійного аналізу

В еквівалентній точці вихідна концентрація внутрішнього стандарту та цільової концентрації рівні. У QC-PCR конкуренція між ампліфікацією внутрішнього стандарту ДНК та ДНК-мішені зазвичай призводить до втрати чутливості виявлення. Тим не менше, метод дозволяє виявити лише 0,1% ДНК ГМО (Hübner et al., 1999).

КРИПТОМОНАДИ

Пол Кугренс, Брек Л. Клей, у прісноводних водоростях Північної Америки, 2003

B. Біологічні фактори

Мабуть, одним з найцікавіших аспектів екології криптомонад є відомий феномен, як клептопластиди, який є процесом, при якому хлоропласт поглиненого фотоавтотрофа зберігається, а хлоропласт залишається функціональним протягом певного періоду (Schnepf et al., 1989; Lewitus та ін., 1999). Клептопластиди криптомонадних хлоропластів трапляються у інфузоріях (Stoecker and Silver, 1990) та динофлагелатах (Skovgaard, 1998; Schnepf et al., 1989; Putt, 1990), і ці хлоропласти фотосинтезують і виробляють крохмаль, який може бути доступним джерелом вуглецю для господар (Putt, 1990; Schnepf and Elbrächter, 1992), або він може виконувати метаболічні вимоги за обмеженої доступності їжі (Lewitus et al., 1999).

Клептопластидність особливо важлива для виживання іхтіотоксичного динофлагеляту Pfiesteria piscicida, де хлоропласти криптомонад селективно поглинаються нетоксичними зооспорами. Хлоропласти криптомонади зберігаються приблизно 9 днів, і вони залишаються функціональними протягом цього часу, як визначається поглинанням C 14-бікарбонату (Lewitus et al., 1999). Це утримання хлоропластів сприяє виживанню цієї проміжної стадії в життєвому циклі пфіестерії.

Криміналістична анатомія рослин

Jane H. Bock, David O. Norris, in Forensic Plant Science, 2016

7 Резюме

Таким чином, мікроскопічна або загальна ідентифікація видів рослинної їжі базується на усталених принципах спостережної науки, а не на статистичному аналізі. Часто невідомі рослини в криміналістичних зразках ідентифікують простим мікроскопічним порівнянням із відомими рослинами. Важливо наголосити на використанні повторних підпроб, як уже згадувалося раніше, для забезпечення ретельного аналізу. Слід не рекомендувати покладатися на підготовку одного слайда.

Статистика може бути корисною в лабораторних дослідженнях для того, щоб зробити точніші відмінності неможливими за допомогою простого візуального огляду. Наприклад, для того, щоб визначити, чи епідермальні клітини подібної конформації були з часнику чи цибулі, ми виміряли довжину та ширину багатьох клітин та статистично порівняли їх середній розмір. Епідермальні клітини часнику були значно меншими, ніж клітини епідермальної цибулі (с

МОЛЕКУЛЯРНА БІОЛОГІЯ | Транскриптоміка

Транскриптоміка псування мікроорганізмів

Метабономіка в харчовій науці

Харчова метабономіка продуктів харчування

Використання ЯМР-метабономіки для харчових досліджень і, отже, просування у розумінні взаємодії їжі з організмом передбачає вивчення біорідин людей, які піддаються вибраному добре контрольованому харчуванню. Однак цей підхід схильний до метабономічних проблем, пов'язаних зі здоров'ям, таких як відповідне тренування суб'єктів та контроль дієти, розмір групи та ретельна характеристика контрольної групи. Початкові дослідження в цьому напрямку з'явилися за останні кілька років, як показано в таблиці 2 .

Таблиця 2. Харчові дослідження ЯМР-метабономіки

Рік (и) видання

Метабономічні ефекти конкретних продуктів харчування
Білок молока та м’яса	2007 рік
Чорно-зелений чай	2006 рік
Чай з ромашки	2005 рік
Соєві продукти (містять ізофлавони)	2003, 2005
Інші дослідження
Дієтичний вплив на британську та шведську мови	2004 рік
Вплив стандартизації дієти на профіль біорідин людини	2006 рік
Перспективи харчової метабономіки: відкриття біомаркерів та характеристика метаболічних фенотипів	2007 рік

Перші дослідження цього типу досліджували вплив ізофлавонів сої на склад плазми крові здорових жінок в менопаузі. Зазначені відмінності між профілями ліпопротеїнів, амінокислот та вуглеводів вказують на те, що в енергетичному обміні відбувається зміна, спричинена соєю. Додаткова робота досліджувала метаболічні ефекти прийому ромашки, відмічаючи збільшення рівня гіпурату та гліцину та зниження рівня креатиніну в сечі. Цікаво, що ці ефекти все ще були наявні через два тижні після прийому ромашки. Метаболіти чорного та зеленого чаю при споживанні людиною також порівнювали за складом сечі та плазми, при цьому особливу увагу приділяли метаболічній ролі флавонолів чаю.

Пізніше була проведена робота щодо впливу молока та м’ясного білка на склад сечі та плазми 8-річних дітей, а отже, на їх метаболізм. Результати показують, що різні тваринні білки мають різну метаболічну дію, що спричиняється головним чином змінами складу в сечі (рис. 6). Встановлено, що молочна дієта індукує зменшення екскреції гіпурата з сечею, що свідчить про зміни мікрофлори кишечника. Стверджується, що ця інформація може бути корисною для подальших досліджень впливу біоактивних компонентів у молоці.

Малюнок 6. Аналіз основних компонентів (PCA) бальний графік, що показує два перших основні компоненти для зразків сечі, відібраних до втручання (○) та після вживання м’яса (•) та молока (*).

Відтворено з Bertram HC, Hoppe C, Petersen BO, et al. (2007). Метабономічне дослідження на основі ЯМР щодо впливу дієт на молоці та м’ясному білку, проведених для 8-річних хлопчиків. British Journal of Nutrition 97: 758–763, з дозволу Cambridge University Press.

Окрім досліджень метаболічного впливу конкретних продуктів харчування, було проведено ще кілька досліджень щодо впливу маніпуляцій з дієтою на профіль біорідин людини і, отже, на обмін речовин (табл. 2). Нещодавно була висунута нова концепція, яка названа нутріметабономікою. Це просуває складну нову ідею про те, що для людей по суті характерний певний харчовий фенотип, який визначає їх дієтичні звички та уподобання. Це базувалося на дослідженні метаболічних фенотипів суб'єктів, що характеризуються специфічними поведінковими/психологічними уподобаннями до дієти, а саме "шоколад, що бажає" або "шоколад байдужий", для яких були знайдені різні метаболічні біомаркери.

Когнітивні процеси, що лежать в основі вегетаріанства на основі оцінки мозку

3.3 Вегетаріанство, система афектів та пізнання

Пам’ять у птахівному кешуванні та вивченні пісень: загальний механізм або різні процеси?

Нікола С. Клейтон, Джилл А. Соха, "Досягнення у вивченні поведінки", 1999

ЧОМУ КЕШ?

Розсіяне накопичення також може бути вигідним на більш коротких часових шкалах. Болотні синиці (Parus palustris), що живуть у набагато м’якшому британському кліматі, зберігають невелику кількість їжі, яку вони, як правило, вживають пізніше того ж дня (Sherry, Krebs, and Cowie, 1981). Оскільки більшість предметів зберігаються на початку дня, і більшість вилучень кешу відбуваються в сутінках (Cowie, Krebs, and Sherry, 1981; Stevens and Krebs, 1984), було висловлено припущення, що функція кешування їжі полягає у забезпеченні того, щоб птах придбала достатньо енергії, щоб пережити ніч без необхідності підтримувати великий і дорогий запас жиру в організмі протягом дня (Lucas and Walter, 1991; Hurly, 1992). Кешування їжі може також скоротити час, коли окремий птах зазнає внутрішньої та міжвидової конкуренції за їжу в концентрованому джерелі живлення, оскільки їжа може бути швидко зібрана, а потім захована деінде (Clarkson, Eden, Sutherland, and Houston, 1986).

Біотехнологічна експлуатація морських тварин

Технологія подачі кормів: мікрокапсульовані, мікропокриті та біокапсульовані корми

В останні роки відбулося значне вдосконалення технології годівлі в рибному господарстві, що збільшило ріст практики вирощування креветок. Наявність штучно виготовлених дієт для заміщення культивованих живих організмів їжі може полегшити багато проблем, які в даний час обмежують виробництво інкубаторів креветок, (1) знизивши рівень технічних навичок, необхідних для експлуатації інкубаторію, (2) забезпечивши надійне забезпечення збалансованого в харчуванні корми для личинок, (3) зменшення джерел забруднення та хвороби личинок, та (4) спрощення конструкції інкубаторію та вимог до капітальних витрат, тим самим полегшуючи розвиток дрібних інкубаторів.

Мікрокапсульовані корми збільшили рівень виживання личинок до 70%. Харчові зерна інкапсулюються разом із ароматизаторами, які залежать від фізичних та хімічних форм харчових зерен. Біокапсуляція - це простий крок, який вкладається у попереднє виробництво живого корму для морських риб на місці. Він включає адгезію біологічних матеріалів, таких як білки та мікроорганізми, які використовуються як пробіотики для збільшення врожайності кормів. Bacillus licheniformis, B. subtilis та B. circulans - найпоширеніші пробіотичні організми, що використовуються в практиці інкапсуляції.

Про ScienceDirect
Віддалений доступ
Магазинний візок
Рекламуйте
Зв'язок та підтримка
Правила та умови
Політика конфіденційності

Ми використовуємо файли cookie, щоб допомогти забезпечити та покращити наші послуги та адаптувати вміст та рекламу. Продовжуючи, ви погоджуєтесь із використання печива .