Межі в неврології

Нейродегенерація

Редаговано
ЧЕН-СІН ГУН

Інститут фундаментальних досліджень з обмеженими можливостями розвитку (IBR), США

Переглянуто

Гаді Турджеман

Університет Аріель, Ізраїль

Бінкай Чи

Гарвардська медична школа, США

Приналежності редактора та рецензентів є останніми, наданими в їхніх дослідницьких профілях Loop, і вони не можуть відображати їх ситуацію на момент огляду.

росту

  • Завантажити статтю
    • Завантажте PDF
    • ReadCube
    • EPUB
    • XML (NLM)
    • Додаткові
      Матеріал
  • Експортне посилання
    • EndNote
    • Довідковий менеджер
    • Простий текстовий файл
    • BibTex
ПОДІЛИТИСЯ НА

СТАТТЯ Оригінального дослідження

  • 1 Ключова лабораторія нейронної структурної біології Шеньчженьського науково-дослідного інституту Шеньчженьського Пекінського університету - Медичний центр Науково-технічного університету Гонконгу, Шеньчжень, Китай
  • 2 Ключова лабораторія трансляційної медицини дерматології Шеньчжень, Біомедичний науково-дослідний інститут, Пекінський університет Шеньчжень - Медичний центр Науково-технічного університету Гонконгу, Шеньчжень, Китай
  • 3 Департамент дерматології, лікарня Пекінського університету, Шеньчжень, Шеньчжень, Китай
  • 4 Відділ наук про життя, Гонконгський університет науки і техніки, Гонконг, Китай

Вступ

Хвороба Альцгеймера (АД) є найпоширенішою причиною деменції у людей похилого віку. Це незворотний нейродегенеративний розлад, що має ознаки старечих бляшок, нейрофібрилярних клубків (NFT) та нейрональних втрат (Barker et al., 2002; Vinters, 2015). Клінічні симптоми АД включають втрату недавньої пам’яті, помилкове судження, зміни особистості та поступову втрату міркувань (Робакіс, 2011). Незважаючи на те, що він був широко досліджений, точний патогенез БА ще не з’ясований.

МікроРНК (miRs) - це дволанцюгові РНК, які відіграють регуляторну роль у експресії білка (Iwakawa and Tomari, 2015). Експресія білка, регульована miRs, відіграє важливу роль у патогенезі АД, і miRs можуть бути більш чутливим підходом для виявлення та управління АД (Basavaraju and de Lencastre, 2016; Gupta et al., 2017; Reddy et al., 2017 ). Аномалії цитоскелета та синаптичні порушення типові для стресу, спричиненого амілоїдом β (Aβ) (Bamburg and Bernstein, 2016). МіР мають здатність регулювати зміни цитоскелета при багатьох захворюваннях, особливо ракових (Gross, 2013; Kanakkanthara and Miller, 2013; Zhang et al., 2019).

Цитоскелет відіграє життєво важливу роль у підтримці нервової системи у дорослому віці. Зміни нейрофіламентів та білків, пов’язаних з мікротрубочками, пов’язані з різноманітними нейродегенеративними захворюваннями (Bettencourt da Cruz et al., 2005). На ранніх стадіях БА було відомо, що цитоскелет порушується в нейронах. Білок тау гіперфосфорильований при БА, що призводить до утворення клубків та аномального складання мікротрубочок (Lindwall and Cole, 1984; Alonso et al., 1996). Окрім тау, багато інших білків, що беруть участь у регуляції цитоскелету, можуть бути пов'язані з патогенезом АД (Bamburg and Bernstein, 2016; Brandt and Bakota, 2017). Наші попередні дослідження також показали, що мікроРНК, що регулюють розростання нейритів, також беруть участь у порушенні β-нейронів (Ye et al., 2015; Fan et al., 2016). Повна секвенція транскриптомів показала, що деякі пов'язані з цитоскелетом білки підвищували регуляцію в корах подвійних трансгенних мишей APPswe/PS1ΔE9 (миші APP/PS1) у порівнянні з контрольними мишами, що відповідають віку (база даних NCBI GEO: GSE87550), включаючи сімейство RAS-подібних 12 (Rasl12), плекстрин (Plek) та зв’язуючий білок 2 синдекана (Sdcbp2). Плек може спричинити реорганізацію цитоскелета через залежний від расу шлях (Ma and Abrams, 1999; Baig et al., 2009). Члени сім'ї Синдеканів, спільно з Sdcbp2 (Syndecan Binding Protein 2, Syntenin2), можуть опосередковувати апоЕ-залежний невритовий ріст, взаємодіючи з ниткою актину (Zimmermann et al., 2005; Kim et al., 2014).

У цьому дослідженні ми досліджуємо роль miR-409-5p у регуляції розвитку невритів, націлюючись на Plek, що може сприяти синаптичній недостатності та когнітивній дисфункції при AD.

Матеріали і методи

Реагенти

Кроличі поліклональні антитіла проти Plek (12506-1-AP) та SDCBP2 (10407-1-AP) були від компанії ProteinTech. Кроличі поліклональні антитіла проти α-тубуліну (№2144) були отримані від Cell Signaling Technologies. Мишачі моноклональні антитіла проти β-тубуліну III (T8575), вторинні антитіла IgG проти корів кролика (A9169) та Aβ1–42 (03111) були від Sigma. Міміки або інгібітори miR-409-5p були синтезовані компанією RiboBio.

Плазмідна конструкція

Фрагменти 3'UTR миші Plek та Sdcbp2 ампліфікували за допомогою ПЛР з бібліотеки кДНК миші. ПЛР-амплікон клонували у вектор psiCHECK2 між Кхоя і НіI сайти, що використовують одношаговий набір для клонування ClonExpress ® II (Vazyme). Для аналізу активності люциферази ми ввели мутації на кожному сайті зв'язування miR-409-5p miR шляхом перекриття ПЛР. КДНК миші Plek ампліфікували за допомогою ПЛР і клонували у вектор PTGFP (модифікований вектор у формі pEGFP-C1) за допомогою Кхоя і ЕкоСайти РІ. Всі послідовності праймерів показані в таблиці 1. Послідовності всіх конструкцій підтверджені секвенуванням ДНК.

Таблиця 1. Послідовності синтезованих miR імітують/інгібують або siRNA.

Тварини

Подвійні трансгенні миші APPswe/PS1ΔE9 містили два мутовані гени людини, APP695 зі шведською мутацією K595N/M596L та пресенілін1 без екзону9 (PS1ΔE9). Миші спочатку надходили з лабораторії Джексона (Borchelt et al., 1996) і купувались у Модельному дослідницькому центрі тварин Нанкінського університету (Нанкін, Китай). Експериментальний протокол, затверджений Комітетом з етики експериментів на тваринах, Університет Шеньчжень-Пекін-Медичний центр Науково-технічного університету Гонконгу (SPHMC) (номер протоколу 2011-004), проводився, як описано раніше (Wan et al. ., 2010).

Клітинні культури та трансфекція

Клітини PC12, клітини Neuro2A та клітини HEK293T культивували, як описано раніше (Fan et al., 2016; Wu et al., 2016). Первинні нейрони гіпокампа готували з ембріональних ембріонів мишей C57B6 18,5 дня. Гіпокампі розтинали, подрібнювали та трипсинували. Нейрони висівали на чашки Петрі, покриті полі-D-лізином (Sigma), і культивували в нейробазальному середовищі (Life Technologies), що містить 2% B27 (Life Technologies) і 0,5 мМ L-глутаміну, у зволоженому інкубаторі при 37 ° C з 5% CO2. Клітини PC12, клітини Neuro2A або первинні нейрони гіпокампа трансфікували імітатором або інгібітором miR-409-5p за допомогою реагенту для трансфекції ViaFect (Promega) відповідно до інструкцій виробника.

Aβ1–42 Лікування

Aβ1–42 (03111, Sigma) розчиняли 1% гідроксидом амонію шляхом змішування піпетками з подальшим розведенням до 200 мкМ у PBS. Розведений Aβ1–42 інкубували при температурі 37 ° C протягом ночі, щоб викликати агрегацію перед використанням. Агрегований Aβ1–42 розбавляли до 4–10 мкМ як кінцеву концентрацію з культуральним середовищем і обробляли клітинами. Токсичність клітин, індукована Aβ1–42, була виявлена ​​в нейронах первинного культивування гіпокампа (додатковий малюнок S1).

Аналіз життєздатності клітин

П'ять тисяч нейронів гіпокампа були поміщені в кожну лунку в 96-лункову пластину. Двісті наномолярів miR-409-5p було трансфіковано. Через сорок вісім годин після трансфекції нейрони гіпокампа інкубували з CellTiter 96 AQueous (Promega) протягом 4 год, утворюючи нерозчинний фіолетовий формазан. Потім поглинання при OD490 вимірювали за допомогою планшетного зчитувача ELISA (BioRad). Всі експерименти повторювали щонайменше тричі.

Аналіз репортера люциферази

Клітини 293T котрансфікували диким типом (WT) або мутували psiCHECK-Plek-3′UTR або psiCHECK-Sdcbp2-3′UTR та miR-409-5p протягом 24 годин. Клітинний лізат збирали, а для вимірювання активності люциферази використовували набір для аналізу гена репортерного люциферази (Promega). Всі експерименти повторювали щонайменше тричі.

Екстракція РНК та ПЛР у реальному часі

Загальну РНК екстрагували за допомогою реагенту TRIzol (Life Technologies) відповідно до інструкцій виробника. Кількість РНК вимірювали за допомогою NanoDrop 2000 (Thermo Fisher Scientific). було синтезовано кДНК і проведено кількісну ПЛР (qPCR), як описано раніше (Wu et al., 2016). кДНК синтезували із 100 нг загальної РНК за допомогою miR-специфічних праймерів RT, використовуючи систему зворотної транскрипції (Promega). Потім qPCR проводили у трьох примірниках з розведенням кДНК 1: 4, використовуючи 2 × SYBR зелений SuperMix (Bio-Rad) на системі детектування ПЛР у реальному часі CFX96 (Bio-Rad). Рівень експресії miR-409-5p нормалізували порівняно з рівнем U6. Гліцеральдегід-фосфатдегідрогеназа (GAPDH) була використана в якості контролю кількісної оцінки Plek та Sdcbp2 мРНК. Дані збирали та аналізували за допомогою програмного забезпечення Bio-Rad, використовуючи метод 2 –ΔΔCt для кількісного визначення рівня відносної експресії. Послідовності праймерів показані в таблиці 2. Всі експерименти повторювали принаймні три рази.

Таблиця 2. Послідовність праймерів, що використовуються для ПЛР у реальному часі.

Вестерн-блотинг

Клітини лізували в буфері RIPA з коктейлем інгібітора протеази (Thermo Scientific) протягом півгодини. Лізат мозку збирали і піддавали SDS-PAGE, як описано раніше (Wu et al., 2016). Потім відокремлені гелем білки переносили на NC-мембрану з наступним Вестерн-блоттінгом первинним антитілом 1: 200 при 4 ° C протягом ночі та кон'югованим з пероксидазою хроном вторинним антитілом 1: 5000 протягом 2 годин при кімнатній температурі. Сигнали розроблялися на хемілюмінесцентній підкладці Super Signal West Pico (Thermo Scientific). Оптичну щільність визначали кількісно за допомогою Quantity One (Bio-Rad). Для кількісного визначення значень градусів сірого використовувалося програмне забезпечення ImageJ.

Флуоресценція Імунозабарвлення

Клітини фіксували протягом 30 хв при кімнатній температурі в 4% розчині PFA, а потім проникали та блокували в PBS, що містить 1% BSA, 4% козячої сироватки та 0,4% Triton X-100 протягом 30 хв при кімнатній температурі. Первинне антитіло (анти-β-тубулін III, 1: 500, Sigma, моноклональне антитіло миші) при 4 ° С використовували для інкубації клітин протягом ночі, а потім кон'юговане флуоресценцією вторинне антитіло (анти-миша 555, 1: 500, Джексон Immuno Research) протягом 2 год при кімнатній температурі. Нарешті, клітини фарбували DAPI протягом 5 хв, потім промивали PBS з подальшою деіонізованою водою і монтували з антибликовим монтажним середовищем (Beyotime). Зображення нейронів було зафіксовано конфокальним мікроскопом Zeiss LSM 710 із об'єктивом 40 ×. Зображення аналізували за допомогою Zen 2012 (Zeiss) та ImageJ (NIH).

Кількісна оцінка виросту невритів

При морфологічному дослідженні клітин вимірювали довжину найдовшого невриту та загальну довжину невриту, щоб кількісно визначити наріст невритів за допомогою програмного забезпечення ImageJ. Для кожного вимірювання з випадково вибраних полів було підраховано щонайменше 100 клітин. Кожен експеримент повторювали принаймні три рази. Підраховано загальну кількість кінчиків кінчиків, що представляє кількість невритів з окремих клітин.

Обчислювальний аналіз цілей miR-409-5p

Гени-мішені для miR-409-5p прогнозували чотири бази даних: miRDB 1, mi-Randa 2, DIANA microT-CDS (v5) 3 та targetScan 4. Щоб звузити пул потенційних цілей, стор-значення порогового значення та мікропорогового значення були встановлені 0,05 та 0,7 відповідно. Засіб Venn 5 використовувався для перетину чотирьох цільових генів бази даних. Біологічні функції та анотація шляхів KEGG генів перетину були проаналізовані Gene Ontology 6 та DIANA, відповідно.

Статистичний аналіз

Дані виражаються як середнє значення ± SD. Статистичне порівняння проводили за допомогою програмного забезпечення SPSS 20.0. Неспарений т-Тест був використаний для аналізу відмінностей між двома групами, а потім ANOVA post hoc аналіз за допомогою критерію Даннета був використаний серед кількох груп, а двосторонній ANOVA був використаний для аналізу відмінностей між різним віком мишей WT та APP/PS1. P-значення ∗ стор ∗∗ стор ∗∗∗ стор ∗ стор ∗∗ стор ∗∗ стор ∗ стор ∗∗ стор 1.2) у мишей APP/PS1 за допомогою цілого транскриптома, що проводився раніше в нашій лабораторії.

Таблиця 3. Дев'ять генів - потенційні цільові гени.

3'UTR Plek та Sdcbp2 були проаналізовані за допомогою бази даних miRanda. Прогнозування бази даних вказувало, що Plek мав два сайти зв'язування miR-409-5p у своєму 3'UTR, а Sdcbp2 - один (Малюнок 6A). Щоб дослідити потенційну роль miR-409-5p у трансляційній регуляції генів-мішеней, ми котрансфікували репортерну конструкцію люциферази, що містить різні фрагменти Plek 3′UTR або Sdcbp2 3′UTR, разом з miR-409-5p. Котрансфекція miR-409-5p призводила до зменшення активності люциферази при експресії повнорозмірного фрагмента Plek 3′UTR, що містить ділянку I та Sdcbp2 3′UTR (Фігури 6B, C). Ми також генерували сайт-спрямовані мутації на Plek 3′UTR сайті I та Sdcbp2 3′UTR, і пригнічення активності люциферази зникло. Ми виявили, що miR-409-5p суттєво пригнічує рівень мРНК Plek та рівень експресії білка в первинних культивованих нейронах гіпокампа миші (Фігури 6D, F), хоча він не впливав на експресію Sdcbp2 (Фігури 6E, G). Наші результати показали, що Plek може бути одним із цільових генів miR-409-5p.

Малюнок 6. Plek та Sdcbp2 можуть бути цілями miR-409-5p. (A) Сайти дикого типу (WT) та мутовані плеки або сайти зв'язування Sdcbp2 з miR-409-5p. (B) Відносна люмінесценція реніли/люциферази конструкції вектора psiCHECK2, що містить Плек або мутантний Плек, котрансфікований miR-409-5p в клітинах HEK 293T, з порожнім вектором psiCHECK2 як контролем. (C) Відносна люмінесценція реніли/люциферази конструкції вектора psiCHECK2, що містить Sdcbp2 або мутант Sdcbp2, котрансфікованих miR-409-5p в клітинах HEK 293T, з порожнім вектором psiCHECK2 як контролем. Результати були показані як середнє значення ± SD (∗ стор ∗∗ стор ∗ стор ∗ стор ∗ стор ∗∗ стор Ключові слова: хвороба Альцгеймера, бета-амілоїдний пептид, мікроРНК, mir-409-5p, Plek

Цитування: Guo J, Cai Y, Ye X, Ma N, Wang Y, Yu B і Wan J (2019) MiR-409-5p як регулятор росту невритів, що регулюється в APP/PS1 Мишача модель хвороби Альцгеймера. Спереду. Невроски. 13: 1264. doi: 10.3389/finins.2019.01264

Отримано: 20 серпня 2019 р .; Прийнято: 07 листопада 2019 р .;
Опубліковано: 28 листопада 2019 р.

Ченг-Сінь Гун, Інститут фундаментальних досліджень з обмеженими можливостями розвитку (IBR), США

Бінкай Чі, Гарвардська медична школа, США
Гаді Тургеман, Університет Аріель, Ізраїль