Білковий інгібітор підшлункової ліпази з насіння Litchi chinensis

Света В. Мхатре

1 Департамент медичних біотехнологій, Школа біомедичних наук MGM, Інститут наук про здоров'я MGM, Сектор 1, Камоте 410209, Наві Мумбаї, Махараштра, Індія

2 Дослідницький центр MGMIHS OMICS, Центральна науково-дослідна лабораторія MGM, Медичний коледж і лікарня MGM, Інститут наук про здоров'я MGM, Сектор 1, Камоте 410209, Наві Мумбаї, Махараштра, Індія

Аміта А. Бхагіт

Раман П. Ядав

РЕЗЮМЕ

ВСТУП

МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ

Виділення білка з насіння Litchi chinensis

Визначення концентрації білка

Для оцінки концентрації білка, виділеного з насіння Litchi chinensis, був проведений модифікований протокол для мікропроби Бредфорда (21). В аналізі 10 мкл білка додавали в 96-лункову мікропланшетну платівку (Tarsons Products Pvt. Ltd, Колката, Індія) і додавали 200 мкл 1 × реагенту Бредфорда (SERVA Electrophoresis GmbH, Гейдельберг, Німеччина). Платівку інкубували при кімнатній температурі (25 ° С) протягом 5 хв, а поглинання (А) вимірювали при 630 нм за допомогою зчитувача планшетів ELISA (модель Readwell TOUCH ™; Robonik, Ambernath, India). Стандартна крива бичачого сироваткового альбуміну (BSA; Sigma-Aldrich, Merck, Сент-Луїс, Міссурі, США) (1 мг/мл) була побудована з використанням значень поглинання, отриманих при різних розведеннях, коливаючись від 0 до 0,35 мг/мл. Загальну концентрацію білка, виділеного з насіння Litchi chinensis, розраховували за стандартною кривою BSA, використовуючи таке рівняння:

де A - поглинання при 630 нм, а γ - концентрація білка в мг/мл.

Аналіз активності ліпази з використанням синтетичного субстрату

Аналіз ліпази проводили методом, описаним Winkler і Stuckmann (22) з невеликими модифікаціями. Аналіз проводили у трьох примірниках із використанням 96-лункового мікропланшетного планшета (Tarsons Products Pvt. Ltd). Розчин ферменту ліпази підшлункової залози (5 мг/мл) із свинячої підшлункової залози (Sigma-Aldrich, Merck) готували в 0,1 М натрій-фосфатному буфері (pH = 8,0) і зберігали при 2-8 ° C до використання. Субстратом, що використовувався в цьому дослідженні, було 4,5 мг п-нітрофенілпальмітату (Sigma-Aldrich, Merck), розчиненого в 200 мкл N, N-диметилформаміду (SD Fine-Chem Ltd), і об'єм додавався до 10 мл, додаючи 0,1 М натрієвий фосфатний буфер (рН = 8,0). Реакційну суміш (10 мкл панкреатичної ліпази, 40 мкл 0,1 М фосфатного буфера натрію (рН = 8,0) і 150 мкл розчину п-нітрофенілпальмітату) інкубували при 37 ° С протягом 30 хв і вимірювали абсорбцію (А) при 405 нм при 0 і 30 хв. Одна одиниця ліпазної активності визначається як кількість вивільнення 1 нмоль/хв вільного фенолу із субстрату (п-нітрофенілпальмітату) в 0,1 М фосфатному буфері натрію (pH = 8,0) при 37 ° C.

Аналіз активності ліпази з використанням природного субстрату

Аналіз ліпази проводили за допомогою дещо модифікованого титриметричного методу (23) з оливковою олією (Research-Lab Fine Chem Industries, Мумбаї, Індія) та свинячою панкреатичною ліпазою (тип II). Розчин підшлункової залози свині (2 мг/мл) готували у 200 мМ трис-HCl (Sigma-Aldrich, Merck) буфер (pH = 7,7). Для визначення активності ліпази, автоклавовану дистильовану воду (2,5 мл), трис-HCl-буфер (1 мл), оливкову олію (3 мл) і фермент ліпази підшлункової залози (0,5 мл) ретельно перемішували та інкубували в інкубаторі з орбітальним струшувачем вентилятора. (Neolab Instruments, Мумбаї, Індія) у фіксованому положенні протягом 30 хв при 37 ° C. Реакцію зупиняли додаванням 3 мл 95% етанолу (Labindia, Navi Mumbai, India) з подальшим додаванням чотирьох крапель 0,9% індикатора тимолфталеїну (S D Fine-Chem Ltd), приготованого в 95%

етанолу, а потім аналізували активність ліпази підшлункової залози. Титрування проводили 50 мМ розчином гідроксиду натрію (EMPARTA®, Merck KGaA, Дармштадт, Німеччина) для отримання світло-блакитного кольору. Одна одиниця ферменту гідролізує 1 мкмоль/хв жирної кислоти з тригліцериду при рН = 7,7 і 37 ° С.

Вимірювання інгібуючої активності ліпази

Для визначення інгібуючої активності ліпази підшлункової залози білок насіння у кінцевій концентрації 100 мкг/мл попередньо інкубували як у синтетичному, так і в природних субстратах, і після завершення реакції in vitro відсоток інгібування розраховували шляхом визначення активності ферменту (U) з використанням абсорбції ( п-нітрофенілпальмітат) і титриметричне значення (оливкова олія). Відсоток інгібування розраховували на основі значень активності ферменту (ЕА) тесту та інгібітора, використовуючи наступне рівняння:

Активність ферменту без присутності інгібітора становила 1 та 50 Од/мл на синтетичному та природному субстраті відповідно.

Вплив трипсинізації на інгібуючу активність панкреатичної ліпази

Білок насіння Litchi chinensis обробляли 0,05% трипсином (Genetix Biotech Asia Pvt. Ltd., Нью-Делі, Індія) для вивчення впливу трипсину на активність інгібітора панкреатичної ліпази. Розчин білка (500 мкг/мл) і трипсину у співвідношенні 1: 1 інкубували при 37 ° С протягом 2 год з подальшою оцінкою інгібуючої активності ліпази підшлункової залози білка Litchi chinensis, вираженого у відсотках інгібування.

Визначення значення IC50

Значення IC50 білка насіння Litchi chinensis вимірювали за допомогою лінійної регресії при концентраціях 25, 50, 75 та 100 мкг/мл. Активність ліпази підшлункової залози аналізували відповідно до вищезазначеного протоколу, і відсоток інгібування будували графіком щодо концентрації. Концентрацію при 50% інгібуванні визначали і виражали в мкг/мл.

Вплив рН на інгібуючу активність панкреатичної ліпази білка насіння Litchi chinensis

Стійкість інгібуючого білка насіння Litchi chinensis при кінцевій концентрації 100 мкг/мл вивчали при різних значеннях рН (3, 5, 7, 8 та 9). Розчини різного рН готували шляхом регулювання рН автоклавованої дистильованої води з використанням 6 М розчинів HCl та 6 M розчинів NaOH. Потім кожен із цих розчинів (500 мкл) та інгібуючий білок насіння (500 мкл) змішували у співвідношенні 1: 1 та попередньо інкубували при 37 ° С протягом 30 хв. Аналіз інгібування ліпази проводили з використанням синтетичного субстрату, описаного раніше. Об'єм 40 мкл цієї реакційної суміші додавали до 10 мкл ферменту, а потім 150 мкл субстрату відповідно до протоколу аналізу ліпази. Кожну реакцію проводили у трьох примірниках. Реакційну суміш інкубували при 37 ° С протягом 30 хв, а потім вимірювали абсорбцію (А) при 405 нм. Інгібування ферменту виражали у відсотках за допомогою рівняння. 2.

Додецилсульфат натрію в поліакриламідному гелі електрофорез ізольованого білка насіння Litchi chinensis

Нередукуючий SDS-PAGE проводили за допомогою дещо модифікованого протоколу Леммлі (24), а електрофорез проводили за допомогою апарата електрофорезу mini-PROTEAN Tetra (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA). Використовували стандартний неперервний невідновлюючий гель з 10% розсмоктуючим гелем та 4% гелем для укладання. Об'єм завантаження зразків стандартизували до 25 мкл і напругу підтримували на рівні 120 В. Гель фарбували модифікованим методом фарбування блискучим синім кольором Кумасі (25), який складався з фарбування гелю 1% розчином блискучого синього кольору Кумасі R250 (Кемфасол, Thane, India), 50% метанолу (Ablychem Laboratories Pvt. Ltd), 10% льодовикової оцтової кислоти (SD Fine-Chem Ltd) і 39% дистильованої води протягом 4-5 год з подальшим знебарвленням гелю розчином 40 % метанолу, 10% оцтової кислоти та 50% дистильованої води, доки смуги не будуть видні. Потім знебарвлення зупиняли і гель зберігали у 5% -ній оцтовій кислоті для подальшого аналізу. Білкова смужка (61 ± 2) кДа була виділена з гелю шляхом вирізання певної частини гелю з подальшим центрифугуванням при 806 × g (модель R-8C; REMI Laboratory Instruments). Інгібуючу активність підшлункової ліпази (з використанням синтетичного субстрату) білка, виділеного із смуги, перевіряли способом, описаним вище.

Кристалізація чистого білка насіння Litchi chinensis

Для оцінки однорідності виділеного білка кристалізацію проводили за допомогою комерційного набору (Protein Crystallization Starter Kit, Jena Bioscience, Єна, Німеччина) із використанням періодичного методу кристалізації, який має подібну стратегію піпетування, як метод підвішування крапель (26). Близько 4 мкл попередньо змішаного розчину осаджувача (що містить 30% (м/об) ПЕГ 5000-ММЕ, 1 М NaCl і 50 мМ ацетату натрію; рН = 4,4) піпетували на світловий мікроскоп (модель MLM; Magnus Analytics, New Делі, Індія) слайд. Потім 2 мкл (1,2 мкг) розчину білка насіння Litchi chinensis додавали до краплі осаджувального розчину і під мікроскопом спостерігали утворення кристалів при збільшенні 40 ×.