Харчова цінність борошнистого черв’яка, що вирощується Acrocomia aculeata Целюлозне борошно

Афілійований факультет точних наук і технологій, Федеральний університет Гранде-Дурадос, штат Дурадос, Мату-Гросу-ду-Сул, Бразилія

цінність

Афілійований факультет точних наук і технологій, Федеральний університет Гранде-Дурадос, штат Дурадос, Мату-Гросу-ду-Сул, Бразилія

Філія Федерального університету Фронтейри Сул, Реалеза, Парана, Бразилія

Партнерський курс хімії, Державний університет імені Мату-Гросу-ду-Сул, Дурадос, Мату-Гросу-ду-Сул, Бразилія

Афілійована лабораторія очищення білка та біологічних функцій, Відділ природничих наук, Федеральний університет Мату-Гросу-ду-Сул, Кампо-Гранде, Мату-Гросу-ду-Сул, Бразилія

  • Аріана Віейра Алвес,
  • Еліана Жанет Санджинес-Аргандоня,
  • Аделіта Марія Лінцмаєр,
  • Клаудія Андреа Ліма Кардозу,
  • Марія Лігія Родрігес Македо

Цифри

Анотація

Цитування: Алвес А.В., Санджинес-Аргандоня Е.Я., Лінцмаєр А.М., Кардосо КАЛ, Маседо MLR (2016) Харчова цінність борошнистого черв'яка, вирощеного на борошняному борошні Acrocomia aculeata. PLoS ONE 11 (3): e0151275. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0151275

Редактор: Клод Уікер-Томас, CNRS, ФРАНЦІЯ

Отримано: 3 вересня 2015 р .; Прийнято: 25 лютого 2016 р .; Опубліковано: 14 березня 2016 р

Наявність даних: Усі файли дієтичних композицій доступні з бази даних Figshare (https://dx.doi.org/10.6084/m9.figshare.2072800.v1).

Фінансування: Підтримку надала стипендія Masters (Вигоду: AVA): Fundação de Apoio ao Desenvolvimento do Ensino, Ciência e Tecnologia do Estado de Mato Grosso do Sul (FUNDECT) [http://fundect.ledes.net/]. Була надана додаткова фінансова підтримка обладнання (Перекладено: EJSA): Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) [http://www.capes.gov.br/]. Фінансисти не мали жодної ролі у розробці досліджень, зборі та аналізі даних, прийнятті рішення про публікацію чи підготовці рукопису.

Конкуруючі інтереси: Автори заявили, що не існує конкуруючих інтересів.

Вступ

Комахи протягом історії відігравали важливу роль у харчуванні людей, особливо в Африці, Азії та Латинській Америці [1,2]. По всьому світу занесено в каталог понад 2000 видів їстівних комах [3], у тому числі 135 у Бразилії [4]. У другій половині XXI століття очікується швидкий приріст людської популяції, що призведе до зниження доступності їжі, особливо тваринного білка [5,6].

За даними Продовольчої та сільськогосподарської організації ООН (ФАО) [7], у 2050 році ми становитимемо дев’ять мільярдів людей, яким буде потрібно більше джерел їжі. У 2013 році після Міжнародної конференції з лісів з питань продовольчої безпеки та харчування ФАО опублікувала звіт [8], який заохочує споживання комах як спосіб боротьби з голодом та сприяння продовольчій безпеці; комахи є джерелом хорошого харчового білка для людини.

Введення нових продуктів харчування в раціон людини, незважаючи на проблеми, має прецедент, тобто негативні враження щодо деяких видів продуктів харчування можуть бути переглянуті. Споживачі виявили, що певні сири з сильним смаком та запахом можуть бути зі смаком, а споживання живих тварин (наприклад, устриць) та сирого м’яса (наприклад, сашими, карпаччо) зараз є поширеним явищем [9].

Здається цілком нелогічним, що вживання в їжу таких безхребетних, як омари та креветки (які харчуються матеріалом, що розкладається), вважається нормальним для споживання людиною; тоді як споживання комах (також безхребетних та членистоногих, деякі виключно рослиноїдні тварини) сприймається з упередженням [10]. Інформація про те, що комахи мають високу харчову цінність і їх можна вирощувати стійким чином, може зруйнувати бар'єри упереджень і дозволити використовувати комах як джерело їжі або харчову добавку.

Комахи дуже ефективні в біотрансформації органічної речовини (високий коефіцієнт конверсії корму), перетворюючись на біомасу з високою поживною цінністю [11,12]. Наприклад, личинки комах (різних видів), виведені в неволі, в заздалегідь встановлених умовах перетворюють рослинну біомасу на біомасу тварин до 10 разів ефективніше, ніж велика рогата худоба [8], головним чином завдяки їх пойкілотермічній характеристиці ("холоднокровні тварини" ). Вони використовують менше енергії для підтримки тепла тіла, оскільки використовують середовище для регулювання температури тіла [12].

Таким чином, розведення комах може забезпечити стійке виробництво їжі з меншим впливом на довкілля, ніж звичайна худоба [13]. Чверть світових земель сьогодні використовується для поголів'я 1,7 мільярда великої рогатої худоби, тоді як третина орних земель використовується для посіву зерна, що підтримує худобу [14]. Масове виробництво комах для споживання людиною промисловими методами є технічно здійсненним. Для задоволення потреб у білках 100 людей, що розводять жуків, знадобиться лише 40 м 3 [15]. Нещодавні приклади їстівних комах, котрі комерційно розводяться для споживання людиною, включають домашнього цвіркуна (Acheta domesticus Linnaeus, 1758), пальмового довгоносика (Rhynchophorus ferrugineus Olivier, 1790) та водяного таргана (Lethocerus indicus Lepeletier & Serville, 1825 — Belostomatidae) у Таїланді та водяних жуків у Китаї [15].

Серед їстівних видів комах виділяється борошнистий черв'як Tenebrio molitor Linnaeus, 1758 (Coleoptera, Tenebrionidae), оскільки в даний час він споживається людьми, особливо в Африці, Азії, Америці та Австралії. Це вид комах, який має одну з найбільших кількостей білка (від 47,76 до 53,13%) та ліпідів (27,25 до 38,26%), при цьому внесок енергії варіюється від 379 до 573 ккал/100г [16]. Враховуючи добову енергетичну цінність для дорослої людини 2000 ккал/добу, 100 г T. molitor задовольняють приблизно чверть необхідної добової енергії [17,18,19]. Тому споживання енергії комахами може бути важливим для продовольчої безпеки.

T. molitor є одним з найбільших жуків, які вражають харчові продукти на складах, переважно складах зерна. Цей вид починає відкладати яйця від 4 до 17 днів після копуляції. Одна жінка може виродити в середньому 500 яєць. Ембріональний розвиток триває від 4 до 6 днів, що може бути прискорене при незначному підвищенні температури (від 25 до 27 ° C). Личиночний період - близько 3 місяців; на цій стадії комаха споживається. Середня зріла личинка важить 0,2 г і має довжину 25-35 мм. Після цієї фази личинка перетворюється на лялечку - стадію, яка триває від 5 до 6 днів і завершується дорослою особиною [20].

Розведення комах у неволі вимагає введення штучних раціонів, як правило, що складаються з листя та зерен. У бразильському Серрадо пальма Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. колишній март. (Arecaceae), відомий як bocaiuva або macaúba, багатий і забезпечує фрукти високою харчовою цінністю [21,22,23] та протизапальними властивостями [24,25], головним чином завдяки своїм каротиноїдам та жирним кислотам.

Целюлозна олія бокайуви складається переважно з мононенасичених жирних кислот, особливо олеїнової кислоти. Ненасичені жирні кислоти відіграють важливу роль в організмі людини, наприклад, підтримання імунної системи проти запальних процесів [25].

Альтернативні дієти для T. molitor готували з борошняною борошною з метою підвищення концентрації їх ненасичених жирних кислот. Порівняння харчової цінності личинок, яких годують різними дієтами, може вказати на нові джерела біомаси для підвищення харчової цінності борошнистого черв'яка. У цьому контексті метою даної роботи було визначити хімічний склад личинок T. molitor, вирощених на різних раціонах з борошном з м'якоті бокайуви.

Матеріал та методи

Матеріал

Черв'якові черви були придбані у приватного заводчика (Атракі, Сан-Паулу-СП, Бразилія). Личинки другого покоління вирощували за чотирма борошняними дієтами, що складалася з: пшениці, сої, м’якоті бокайуви та зневоднених ядер бокайуви. Борошно пшениці та сої було придбано на вуличному ринку міста Дорадос-МС, Бразилія. Плоди бокайуви були зібрані в місті Дурадос, штат Міссісіпі; їх очищали, відокремлювали м’якоть та ядра, їх окремо сушили в печі з циркуляцією повітря окремо при 45 ° С протягом 48 годин. Потім їх окремо подрібнювали, а целюлозу просівали в таміс із сітчастим отвором 355 мкм, отримуючи відповідне борошно.

Харчування борошнистого черв’яка

Набутих борошнистих черв'яків витримували у полістирольних коробках (40x30x25 см) протягом 30 днів, щоб завершити свій життєвий цикл. Корм для другого покоління борошнистих черв'яків був розділений на чотири раціони: (A) 50% пшеничного борошна, 50% соєвого борошна (контрольна дієта); (B) 50% контрольна дієта і 50% борошняної м’якоті борошна; (C) 50% контрольна дієта і 50% меленого ядра бокайуви; та (D) 50% борошняної м’якоті бокаїуви та 50% меленого ядра бокайуви.

Приблизно 400 борошняних черв’яків поміщали в коробку відповідно до режиму харчування кожної дієти (A, B, C та D). Середня температура становила 25 ° C, відносна вологість 80% і фотоперіод 10 годин світла (0,18 Klux) і 14 годин темряви (0 Klux). Через 90 днів личинок збирали і заморожували при -6 ° C і зберігали при цій температурі до часу аналізу.

Харчовий склад

Визначено поживний склад чотирьох дієт (A, B, C і D) та дієт A і B, що годували борошнистим хробаком. Оцінювали вміст вологи в печі [25]; закріплений мінеральний залишок (попіл) у печі при 550 ° C [25]; екстракція ліпідів петролейним ефіром за допомогою обладнання Сокслета [25]; вміст білка, визначення азоту, який присутній у зразках методом Кейльдаля [25], використовуючи коефіцієнт перерахунку 6,25; а волокна шляхом кислотної та лужної екстракції [26]. Оцінку вуглеводів проводили за різницею (100 г зразок - волога - попіл - ліпід - білок - волокна). Енергетичну цінність розраховували з використанням коефіцієнта Атвотера, використовуючи 4 ккал/г зразка для білків і вуглеводів та 9 ккал/г для ліпідів [27].

Склад жирнокислого

Олія з борошнистих черв'яків, що харчувались дієтами А і В, видобували за методом Bligh & Dyer [28]. Переетерифікацію тригліцеридів проводили з приблизно 50 мг екстрагованих ліпідних речовин, перенесених у соколі трубки об’ємом 15 мл, до яких додавали 2 мл н-гептану. Суміш перемішували до повного розчинення жирової речовини і потім додавали 2 мл КОН і 2 моль/л метанолу. Суміш перемішували близько 5 хвилин; після поділу фаз 1 мл верхньої фази (гептан та метилові ефіри жирних кислот) переносили у флакони Еппендорфа об’ємом 1,5 мл. Флакони герметично закривали, захищали від світла і зберігали в морозильній камері при -18 ° C для подальшого хроматографічного аналізу.

Склад жирних кислот визначали газовою хроматографією з використанням газового хроматографа з полум'яно-іонізаційним детектором (GC-FID). Для елюції використовували капілярну колону розміром 100 х 0,25 мм х з плавленим діоксидом кремнію 0,20 мкм (SP-2560). Температуру в духовці запрограмували на початок при 100 ° C протягом 1 хв, потім підвищили до 170 ° C при 6,5 ° C/хв.

Потім було проведено ще одне підвищення з 170 до 215 ° C при 2,75 ° C/хв і підтримувалося протягом 12 хв. Останнє підвищення було виконано з 215 ° C до 230 ° C при 40 ° C/хв. Температури інжектора та детектора становили 270 ° C та 280 ° C відповідно.

Зразки (0,5 мкл) вводили в розщепленому стані (1:20), використовуючи азот як газ-носій зі швидкістю волочіння 1 мл/хв. Ідентифікацію метилових ефірів жирних кислот проводили шляхом порівняння з часом утримування зразків сполук зі стандартами (Sigma), елюйованими в однакових умовах зразків.

Аналіз антиоксидантної активності

Екстракт готували із суміші 1 г попередньо вилученої олії борошнистого хробака та 50 мл розчину гідрометанолу (50%). Після відпочинку протягом 60 хв матеріал центрифугували (4000 об/хв) протягом 15 хв і супернатант видаляли. Ацетон (40 мл при 70%) додавали до гранул для проведення другої екстракції після першої процедури екстракції. Супернатанти від обох екстракцій змішували, переносили в колбу і додавали дистильовану воду до повного обсягу 100 мл, отримуючи екстракт.

Радикал ABTS • + (2,2-азино BIS-3-етилбензотіазолін 6 сульфонової кислоти діаммонін) утворився в результаті реакції ABTS • + (7 мМ) з персульфатом калію (140 мМ), суміш реагувала при кімнатній температурі протягом 16 год при відсутності світла з отриманням радикального розчину. Радикальний розчин розбавляли етанолом до поглинання 0,70 (± 0,05) при 734 нм (спектрофотометр Biospectro) для майбутніх аналізів. Зразки (30 мкл) додавали до 3 мл розведеного розчину ABTS • + і поглинання суміші реєстрували через 6 хвилин. Антиоксидантну активність розраховували із застосуванням стандартної кривої 6-гідрокси-2,5,7,8-тетраметилхроман-2-карбонової кислоти (Trolox). Стандартну криву отримували з етанольних розчинів Trolox у концентраціях 100; 500; 1000; 1500 та 2000 мкМ [29]. Результати виражали у мМ тролоксу/г екстракту. Кожне визначення проводили у трьох примірниках.

Аналіз триптичної та хімотриптичної діяльності

Триптичний та хімотриптичний аналізи проводили на мікропланшетах [30]. Аналіз використовує гідроліз хромогенних субстратів BApNA (N α-бензоїл-DL-аргінін p-нітроанілід) до трипсину та SAAPFPNA (сукциніл аланін PF p-нітроанілід) для хімотрипсину.

Триптичну активність борошнистих черв’яків, які годували дієтою А (50% пшеничного борошна та 50% соєвого борошна), оцінювали шляхом інкубації зразків Tris-HCl 50 мМ, рН 8,0 до кінцевого об’єму 70 мкл. Після додавання субстрату час випробування становив 30 хв при 37 ° С. Результати виражали як нмоль/BApNA/хв та МО/мл. Хімотриптичну активність личинок оцінювали шляхом інкубації зразків Tris-HCl 50 мМ, рН 8,0 до кінцевого об'єму 100 мкл. Після додавання субстрату час випробування становив 10 хвилин при 37 ° С, а реакцію зчитували в зчитувачі мікропланшетів Multiskan Go при 410 нм. Результати цього аналізу були виражені як нмоль/SAAPFPNA/хв та МО/мл.

Ферментативні аналізи для оцінки антитриптичного потенціалу та антихимотриптиків личинок проводили, додаючи 10 мкл бичачого трипсину для антитриптичного та 10 мкл бичачого хімотрипсину для антихімотриптичного, щоб визначити, чи мають вони інгібуючу дію на ці ферменти. Після додавання трис-HCl 50 мМ, рН 8,0, додавали відповідні субстрати, продовжуючи інкубацію та зчитування при 410 нм, як описано в триптичному та хімотриптичному аналізах (вище параграф). Для кожного аналізу та зразка проводили три повторення. Реакції зчитували в Multiskan Go Microplate Reader при 410 нм.

Статистичний аналіз

Результати кожного хімічного аналізу були проаналізовані окремо. Всі аналізи проводились у трьох примірниках, а результати виражались як середнє та стандартне відхилення. Середні значення між групами порівнювали за допомогою дисперсійного аналізу (ANOVA), а різниці порівнювали за допомогою тесту Тукі на рівні значущості p Рис. 1.

Дієтичні харчові композиції (A, B, C і D) для вирощування личинок тенебріо молітор (Coleopetera, Tenebrionidae). (A) 50% пшеничного борошна та 50% соєвого борошна (контрольна дієта); (B) 50% контрольна дієта і 50% борошняної м’якоті борошна; (C) контроль дієти 50% і 50% меленого ядра бокайуви; і (D) 50% меленої борошняної м’якоті бокаїуви та 50% ядра бокайуви. Різні літери в подібних колонках для різних дієт суттєво різняться (p Таблиця 1. Харчовий склад личинок Tenebrio molitor (Coleopetera, Tenebrionidae), вирощених на штучних дієтах A і B (фотоперіод 10hLx14hD, T = 25 ° C) та звичайних харчових продуктів.

Відсоток ліпідів борошняних червів становив 39,05% (дієта А) та 40,45% (дієта В). Ліпіди мають важливе значення в дієті, оскільки вони життєво важливі для біологічних та структурних функцій клітин та допомагають у перенесенні жиророзчинних вітамінів, необхідних для харчування організму. Вони також покращують смакові якості їжі за рахунок поглинання та утримання ароматизаторів [37] і впливають на структуру їжі, надаючи м’якість і хрусткість. Енергетично вони важливі, оскільки при окисненні в організмі вони виробляють 9 ккал/г. У деяких країнах ліпіди становлять 30–40% загальної енергії, споживаної людьми в продуктах харчування [35, 37].

Перетравність комах комах порівнянна із звичайним м’ясом [38, 39, 40]. Вміст білка личинок T. molitor (44,83 - 50,07%) був вищим, ніж у продуктах, відомих як багаті білками, таких як курка (42,58%) та яловичина (35,31%) (табл. 1). Однак повідомляється, що загальний білок личинок T. molitor становить від 49,8% до 76,14% [17]. Деякі автори [18] пов'язують цю варіацію харчового складу з відсутністю стандартних методологій вирощування комах або їх кормів.

Висока концентрація білка та засвоюваність є показником того, що цих комах можна використовувати у виробництві їжі для споживання людиною та у виробництві кормів для тварин. Було виявлено, що борошняні черви містять 44,09% незамінних амінокислот, що демонструє якість білка, тому їх можна використовувати як поживні мультисуміші [18].

Оскільки тваринний білок перевершує рослинний, найкращі білкові добавки повинні включати трохи тваринного білка [39]. Багато з цих продуктів містять білок, отриманий з молока; виробництво тварин на молоко спричиняє вплив на навколишнє середовище набагато більше, ніж виробництво комах [39]. Продукти, вироблені на основі комах, стикаються з відносно низьким бар'єром прийнятності, оскільки вони мають на меті залучити споживачів з поживними та екологічними показниками, а джерело білка не видно або його смак не відрізняється (наприклад, заміна соєвого порошку на порошок комах не змінює зовнішній вигляд продукту, смак або текстура) [39]. Комахи, що використовуються у харчовій промисловості, можуть бути високоякісним білковим інгредієнтом для високоякісної білкової добавки.

Іншим важливим внеском личинок T. molitor є волокна, борошняні черви в обох дієтах мали високий вміст клітковини (табл. 1). Споживання продуктів, багатих клітковиною, пов’язане із зменшенням серцево-судинного ризику та зниженням рівня глюкози та ліпідів, пов’язаним із зниженням гіперінсулінемії. Високе споживання клітковини тягне за собою менший ризик розвитку ожиріння [41, 42].

Це дослідження демонструє, що борошнисті черви, що харчуються дієтою, що містить борошно з м’якоті бокайуви (дієта В), є джерелом клітковини, оскільки виявлена ​​кількість була більше 6,0 г/100 г, як встановлено Постановою N 27/1998 Національного агентства з нагляду за здоров'ям [43].

Враховуючи щоденні потреби дорослої людини в мінеральних речовинах (2,8 г), білках (60 г), ліпідах (65 г) та клітковині (30 г) [36], 30 г личинок брали б участь, відповідно, 51%, 23 % 19% і 13% цих поживних речовин.

Склад жирних кислот та антиоксидантна активність

Склад жирних кислот олії, видобутої з борошнистих червів (дієти А і В), представлений у таблиці 2. Суттєвих відмінностей між жирними кислотами личинок у дієтах А і В не було, за винятком присутності (0,12%) каприлу кислота (C8: 0) у личинок на дієті B.