Лящ

Пов’язані терміни:

Протеаза
Аквакультура
Вуглеводи
Ферменти
Білки
Форель
Пептидази
Ніацин
Oncorhynchus mykiss

Завантажити у форматі PDF

Про цю сторінку

Кістляві риби

Баррі Берковиц, Пітер Шелліс, у “Зуби хребетних не ссавців”, 2017

Спариформні

Sparidae

Лящі та свині - це риби, що живуть на дні, переважно харчуються безхребетними. чорний морський лящ (Spondyliosoma cantharus) харчується морськими водоростями так само, як і безхребетних, а зубний ряд дрібних конічних зубів пристосований до захоплення (рис. 4.3 та 4.97). загальний зубчастий (Dentex dentex) - активний хижак риб, цефалад і ракоподібних, із зубним рядом, що складається з міцних конічних, гострих зубів, передні зуби яких найбільші (рис. 4.98А). На зубці кілька дуже дрібних зубів лежать всередині крайових зубів (рис. 4.98B).

Малюнок 4.97. Зуби чорноморського ляща (Spondyliosoma cantharus).

Малюнок 4.98. Зубчаста зубчаста (Зубчаста зубчаста). (А) Вид збоку на верхні та нижні зуби. Ширина зображення = 4 см. RCSOMA/467.51; (B) Спинний вигляд нижньої щелепи, на якому видно численні дрібні зуби, що лежать за більшими передніми зубами. Ширина зображення = 6 см.

Люб'язно надано RCSOMA/467.5.

лящ із позолотою (морський) (S. auratus) має раціон ракоподібних та гетеродонтний зубний ряд, пристосований до схоплювання та дроблення. Передні зуби міцні та загострені, тоді як задні зуби утворюють батарею сплющених зубів різного розміру (рис. 4.99). вівча риба (Archosargus probatocephalus) має подібну дієту до S. auratus та подібний зубний ряд, що складається з трьох-чотирьох пар передніх хапальних зубів, що використовуються для виривання молюсків із гірських порід, та трьох рядів задніх дроблених зубів (рис. 4.100A та B) . Передні зуби чудові тим, що вони не загострені, а сплощені і за формою нагадують різці травоїдних тварин ссавців. Ці зуби розвиваються глибоко в щелепі і прорізуються через верхню кістку (рис. 4.100С). Висота зрілих зубів показує, що заміна зубів різців повинна прорізуватися вертикально на деяку відстань. Опинившись на місці, зуби анкілозуються відкладенням кістки між зубом і навколишньою щелепною кісткою.

Малюнок 4.100. Овеча риба (Archosargus probatocephalus). (А) Зуби на передчелюстній кістці. Ширина зображення = 4 см; (B) Зуби в нижній щелепі. Ширина зображення = 3,7 см; (C) Вигляд спереду нижньої щелепи, що показує положення заміщаючого різцеподібного зуба (зі стрілкою) вглиб попередника. Ширина зображення = 3 см.

Люб'язно надано RCSOMA/467.1.

Рослиноїдні Карантин морський плащ (Crenidens crenidens) має три ряди зубчастих зубців (тобто сплощені зуби з невеликими горбками по краях) (рис. 4.101). Передній ряд має 10 зубів, з чотирма зубчиками на кінчику і по два з кожного боку зубів, другий ряд має зуби з чотирма зубцями, а третій ряд має зуби з трьома зубчиками. Серед цих зубів є кілька міцних зубів (Fishelson et al., 2014).

Малюнок 4.101. Зуби у верхній щелепі морського ляща Карантіна (Crenidens crenidens). Зверніть увагу на зубчасті зубці (D) у передньому ряду (Fr). GR, зубні ряди позаду переднього ряду. Р, піднебіння, V, ротовий клапан. Стрілка вказує на групу смакових рецепторів. Масштаб = 1,2 мм.

Від Fishelson, L., Golani, D., Diamant, A., 2014. SEM-дослідження ротової порожнини членів Kyphosidae та Girellidae (Риби, Teleostei), із зауваженнями щодо Crenidens (Sparidae), основна увага приділяється зубам та смаку кількість бруньок та розподіл. Зоологія 117, 122–130. Люб'язність редакторів Зоологія.

Міждисциплінарна оцінка просторової структури населення для визначення одиниць управління рибним господарством

22.3.7 Смугастий морський лящ (Lithognathus mormyrus) у Середземному морі та прилеглих Атлантичних водах

Смугастий морський лящ (або піщані стеенбри) - прибережний морський вид, дорослі особини якого мешкають на мілководних прибережних водах, але випускають яйця в море. Неповнолітні вербують у лагуни та захищені затоки та поселяються вздовж узбережжя у міру зростання. Смугастий морський лящ не піддається суворим стратегіям управління і націлений на дрібномасштабний рибальський промисел по всьому Середземному морю, часто в місцевих рибних промислах зі змішаними видами (фотографія, вибрана для обкладинки цієї книги, зроблена з ящика одного такого улову в Італії).

Незалежне дослідження популяційної біології характеризувало генетичні відмінності цього виду, демонструючи різні сигнали, отримані з використанням мікросателітів та мітохондріальної ДНК, і виявляючи, що паразитична фауна більш точно наближала структуру, виявлену за допомогою мікросателітів (Sala-Bozano et al., 2009). Аналіз даних історії життя (ріст, дозрівання, зміна статі) запропонував додаткову інформацію, виявивши відмінності між групами, які в іншому випадку не можна було розрізнити (Sala-Bozano and Mariani, 2011). Коли всі наявні дані для кожної людини проаналізовані в багатовимірних рамках (рис. 22.5), можна отримати загальну картину взаємозв’язків між населенням, що населяє досліджувані райони, яка є вичерпною, ніж та, яка отримана за допомогою будь-якого методу, що застосовується окремо.

РИСУНОК 22.5. Індивідуальні дані про смугастого морського ляща, нанесені в простір, ідентифікований першими двома основними компонентами, на основі 20 різних змінних (тобто 14 паразитів, призначення мікросателітів, походження мтДНК, коефіцієнт стану довжини ваги та коефіцієнти росту, дозрівання та статі зміни). Кольори стосуються морських басейнів, відібраних у зразках (див. Сала-Боцано та Маріані, 2011): синій: Атлантичний; фіолетовий: Альборан; червоний: балеарський; зелений: тирренський; чорний: Адріатичний. Еліпси показують обмеження розподілу 95% для кожного ряду даних. (Для тлумачення посилань на колір у цій легенді малюнка читач звертається до Інтернет-версії цієї книги.)

Підтвердження походження дикої та вирощуваної в рибі риби

23.3.3 Морський лящ (Spams aurata)

Подібна база даних була створена для ореща (Sparus aurata). Як і морський окунь, дикий морський лящ містить значно вищі рівні 20: 4n-6 і значно нижчі рівні 18: 2n-6 у порівнянні з їх вирощеними у вирощуванні. Аналіз δ 13 C загальної фракції олії та фракції гліцерин/холін також дав очікувані значення, що відображають більш легкий вміст 13 C у раціоні, що вирощується на фермах, через більший вміст рослинних олій. Значення ізотопів 15 N дотримувались тенденції, яка спостерігається для лосося, а не морського ляща, з вищими значеннями для дикого порівняно з морським лящем.

Аналіз δ 18 O із загальної кількості олії, видобутої з ліпідів плоті морського ляща, також відрізнявся для фермерських та диких морських окунів. Як описано раніше для лосося, ці відмінності пов'язані з метаболічною водою в рибі і можуть відображати географічне походження.

Аналіз основних компонентів був використаний для вивчення багатовимірної структури набору даних про ляща. Ділянки фактора 1 проти фактора 2 (рис. 23.6) демонструють чітке розділення дикого та вирощуваного ляща.

Рис. 23.6. PCA на відсоток вмісту жирних кислот, δ 13 C риб’ячого жиру, δ 15 N холіну та δ 18 O риб’ячого жиру для диференціації дикого та культивованого морського ляща (Sparus aurata).

Морський лящ також був охоплений опитуванням Великобританії, проведеним Агентством з харчових стандартів. Було показано, що 11% зразків «дикого» морського ляща були марковані неправильно.

Електронні носи та мови в забезпеченні безпеки харчових продуктів

11.4.2 Риба

Моніторинг свіжості риби (філе морського ляща) проводили за допомогою потенціометричного ЕТ з обробкою PLS, показуючи високу кореляцію з незалежними методами (мікробний аналіз, загальні біогенні аміни, TVB-N та рН; Gil, Barat, Escriche та ін. та ін., 2008) та оцінка K-1 як інтегрального індексу на основі вимірювань метаболітів АТФ (інозин фосфат, інозин та гіпоксантин) (Gil, Barat, Garcia-Breijo, et al., 2008). Недорогі мініатюризовані трафаретні електроди були використані для вольтамперометричного ЕТ, розробленого для оцінки свіжості риби, демонструючи високу кореляцію з даними SPME-GC (Rodriguez-Mendez, Gay, Apetrei, & De Saja, 2009).

Поводження з рибними відходами: методи обробки та потенційне використання оброблених відходів

Іоанніс С. Арванітоянніс, Айкатеріні Кассаветі, в «Управління відходами для харчової промисловості», 2008 р.

Поводження з відходами

Кістку риби, отриману від природного японського ляща, нагрівали при 600 ° C протягом 24 годин або 900 ° C протягом 12 годин, а потім проводили тест на видалення, додаючи отриманий порошок до розчинів нітратів з водним хромом (Cr 3+) концентрація 3 × 10 -4/М. Суміш перемішували і замочували протягом 2 год, а потім витримували протягом 6 днів без перемішування. Концентрацію хрому в розчині вимірювали за допомогою атомно-емісійного спектрометра з індуктивною зв’язкою. Рибна кістка, нагріта при 600 ° C, демонструвала кращу здатність до видалення, тоді як сира кістка та кістковий порошок, нагріті при 900 ° C, мали меншу та подібну активність відповідно. Кістка сирої риби мала низьку кристалічність, зразок кістки, нагрітий при 600 ° C, був добре кристалізованим гідроксиапатитом, а зразок, нагрітий при 900 ° C, виявив розвиток високої кристалічності гідроксиапатиту. Результати підтвердили потенційне використання нагрітої (600 або 900 ° C) риб’ячої кістки для Cr-іммобілізації (Ozawa et al., 2003).

Степновський та його колеги (2004) провели сорбційні експерименти із використанням сухих лусок червоного окуня (Sebastes marinus), упакованих без тиску в 10–70 см колони ПЕ з опорою на резервуар, наповнений стічними водами з креветочного заводу, протягом 5 годин при кімнатній температурі. Результати показали, що 88–95% астаксантину в його етерифікованій формі було зв’язано з вагами, а максимальною вантажопідйомністю (362 мг/кг сухої маси) було 25–35 см суспензії на вершині ваг. Крім того, уповільнення відтоку стічних вод, що проходять через ваги, збільшило відсоток утримання астаксантину на вагах навіть до діапазону 90–97%. Однак остання продовжила час процесу. Було зроблено висновок, що риб'ячу луску можна використовувати як природний адсорбент для каротиноїдного пігменту (астаксантину) зі стічних вод промисловості морепродуктів.

Годування в інкубаторіях

13.5.6 європейський морський окунь

Європейський морський окунь (Dicentrarchus labrax), поряд із орестом (Sparus aurata), є важливими середземноморськими та південноєвропейськими видами аквакультури (Enes et al., 2011; Carter et al., 2012). Сукупне виробництво становило трохи менше 0,3 млн. Метричних тонн у 2011 році (ФАО, 2014). Європейський морський окунь представляє особливий інтерес через розробку рецептурних кормів, які можна годувати в експериментальних умовах з першого вигодовування, як повідомляється, не впливаючи на ріст у порівнянні з використанням живих кормів (Kaushik, 2002). Комерційні інкубатори досі годують живі та вироблені корми, одночасно відлучаючи ранніх личинок на виготовлені корми. Розробка комерційного корму, який можна годувати з першого годування, є пріоритетом, і прогрес за останні 15 років ілюструється триразовим зменшенням використання артемії на одиницю виробництва мальків (Rekecki et al., 2014). Досягнення цього типу засновані на послідовному вдосконаленні кормів та годівлі, що призводить до того, що більше виготовлених кормів використовується раніше в життєвому циклі личинок та повної заміни живого корму, що відбувається раніше.

Марікультура середземноморських видів

Культура морського окуня та орела

Контроль та управління нерестом морського окуня та морського ляща дозволило реагувати на попит на високоякісні водні продукти, які не можуть регулярно постачатися з риболовлі на основі диких запасів. Це виробництво базується на інкубаторіях (див. Огляд марикультури). Розплод можна утримувати в клітках або в земляних ставках. У таких ставках контроль за періодом фотографії та температурою дозволяє отримувати запліднені яйця майже протягом усього року. Личинок вирощують так само, як і інших морських риб (див Морські риби Личинки) хоча морського окуня можна годувати артемією науплії з першого годування; це позбавляє тягаря вирощування коловерток у цих інкубаторіях. Тенденція йде до розширення, щоб забезпечити економію від масштабу; деякі інкубатори щороку виробляють 20 мільйонів неповнолітніх; ті, хто виробляє менше 1–2 мільйонів неповнолітніх на рік, навряд чи будуть прибутковими.

Зазвичай вода переробляється в інкубаторії для економії енергії та підтримки стабільності фізико-хімічних характеристик. Якість води, доступної в природному середовищі, визначає придатність ділянки для інкубаторію.

Майже все вирощування проводиться в морських клітинах. Усі країни Середземномор'я зробили свій внесок у розвиток, і існує тенденція рухатися все далі на схід. Клітки були встановлені в захищених прибережних водах, але дефіцит таких ділянок та прогрес у технології клітин стимулюють розвиток відкритих ділянок у відкритому морі. Методи, що застосовуються у цьому виді землеробства, нагадують методи, що застосовуються у клітинному вирощуванні лососевих риб. (див. Виробництво лосося) та використовуються однакові клітини. Вони мають діаметр до 20 м і глибину до 10 м. Використовується сухий гранульований корм, і коефіцієнт конверсії постійно покращується (між 1,3 і 2).

Швидкість росту визначається температурою води; у Греції морський окунь досягає ваги 300 г за 11 місяців, але для досягнення тієї ж ваги на узбережжі Франції знадобиться вдвічі більше часу. Це демонструє перевагу східного Середземномор'я.

Інші види, для яких вирощування личинок складніше, вирощують у невеликих масштабах, використовуючи різні техніки. До них належать зубчастий (Dentex dentex), звичайний (диванчастий) морський лящ (Pagrus pagrus), що виробляється в мезокосмах в Греції, і великий бурштин (Seriola dumerilii), що вирощується в Іспанії. Диверсифікація видів відкриває потенціал для збільшення ринків збуту; це стає справедливим для мізерних (Argyrosomos regius) та червоних барабанів (Scianops ocellatus), і відбувається багато інших випробувань.

Стандартні та інноваційні репродуктивні біотехнології для розвитку вирощування плавників

11.5 Виробництво стерильної риби

У багатьох водних видів (лососі, підошви, окуні, морський лящ та ін.) Зразки поліплоїдів життєздатні, а особи з нерівномірним набором хромосом регулярно стерильні. Той факт, що зразки, вирощувані в рибництві, є стерильними, іноді є перевагою для виробництва, оскільки відбувається більший ріст, або ж зразки використовуються в програмах репопуляції на заповідних територіях з метою запобігання інтродукції екзотичних видів (рис. 11.6).

Малюнок 11.8 (А). Застосування термічних ударів до нещодавно запліднених яєць райдужної форелі (Oncorhynchus mykiss). (B) Система тиску для індукції триплоїдії.

Малюнок 11.9. Загальний опис обробок гаметами та ембріонами для маніпуляцій хромосомними наборами. Методи отримання триплоїдного, тетраплоїдного, гіногенетичного та андрогенного потомства порівняно з диплоїдним потомством (деталі описані в тексті).

Модифіковано з Tave D. Генетика для керівників інкубаторіїв риб. 2-е вид. Нью-Йорк: Ван Ностранд Рейнгольд; 1993. с. 415.

Завдяки продуктивним перевагам, наявним лише у триплоїдних самок, ця методика регулярно застосовується в популяціях моносексуальних «жінок», отриманих одним із описаних вище методів. Отримані популяції на 100% стерильні, без ознак статевої зрілості (виробляючи філе кращої якості, що вищу ціну), і їх можна збирати в будь-який час року.

Реовіруси водних організмів

Кібенге, М.Г. Godoy, in Aquaculture Virology, 2016

14.2.3.11 Реовірус від білого ляща (Blicca bjoerkna)

Шахнер та співавт. (2014) повідомили про новий реовірус, виділений виключно з білого ляща (B. bjoerkna L.) (раніше Abramis bjoerkna L.). Білий лящ різного розміру виявляв пошкодження шкіри та зябер різним ступенем, включаючи втрату накипу, ерозію плавників, збільшення вироблення слизу, набряк епідермісу, а також крововиливи головним чином вздовж променів плавника та зябер. Гістологія зябрів характеризувалася надзвичайно делікатним дихальним епітелієм, який, як правило, або відшаровувався від капілярів набряковим набряком, або замінювався келиховидними клітинами, що секретують слиз. Міжшаровий епітелій мав певну інфільтрацію. Найбільш помітною та унікальною знахідкою в окремій зябровій тканині ляща була екстравазація еозинофільної речовини, що нагадує аглютиновані еритроцити, що видавляються з зруйнованих пластинчастих капілярів та дихального епітелію. Відбувалося накопичення еозинофільних зернистих клітин біля основи ламел та клітин-стержів, що вистилають ендотелій аферентних артерій поруч із підтримуючою аркою зябра. Хоча поширення келихоподібних та зернистих клітин було виявлено у інших видів ципрінідів, вони відрізнялися від екстравазації, яка спостерігалася у білого ляща (Schachner et al., 2014).

Лящ