Не спостерігається впливу метформіну на вроджену гіперреактивність дихальних шляхів та посилення реакції на озон у мишей із ожирінням

Стефані А. Шор

Програма молекулярних та інтегративних фізіологічних наук, Департамент охорони навколишнього середовища, Гарвардська школа охорони здоров'я, Бостон, штат Массачусетс

гіперреактивність

Ерін С. Вільямс

Програма молекулярних та інтегративних фізіологічних наук, Департамент охорони навколишнього середовища, Гарвардська школа охорони здоров'я, Бостон, штат Массачусетс

Мін Чжу

Програма молекулярних та інтегративних фізіологічних наук, Департамент охорони навколишнього середовища, Гарвардська школа охорони здоров'я, Бостон, штат Массачусетс

Анотація

ожиріння є фактором ризику розвитку астми. Багаторазові дослідження поперечного перерізу серед великих груп дорослих та дітей з різним етнічним походженням вказують на те, що поширеність астми вища серед осіб із ожирінням та надмірною вагою. Крім того, кілька великих проспективних досліджень показують, що ожиріння спричиняє астму (див. Останні огляди в посиланнях 16, 61 та 63). Пацієнти з астмою з ожирінням, які втрачають вагу, відчувають менше симптомів астми, збільшують швидкість потоку повітря, зменшують пікову варіабельність потоку та покращують контроль астми (21, 43, 68). Ожиріння також впливає на контроль астми та ефективність деяких препаратів від астми (13, 36, 51, 55).

Бігуанід метформін - це пероральний інсуліносенсибілізуючий засіб, який зазвичай використовується при лікуванні діабету 2 типу. Лікування метформіном також покращує діабетичний фенотип ожиріних мишей, зменшуючи рівень глюкози натще і послаблюючи експресію глюконеогенних ферментів у печінці (7, 17, 18, 23, 39, 70). У людей, що отримують метформін, також послаблюються аспекти системного запалення, пов’язаного з ожирінням (4, 10–12, 20). Метою цього дослідження було визначити, чи сприяє гіперглікемія легеневому фенотипу мишей із ожирінням. Відповідно, ми лікували худих мишей дикого типу та ожиріння db/db перорально або водою, або метформіном щодня протягом 2 тижнів. Було використано дві когорти мишей, оброблених метформіном та водою. В одній когорті реакцію дихальних шляхів оцінювали через 24 години після останньої обробки, щоб визначити, чи може метформін послабити вроджений AHR мишей db/db. В іншій когорті, 24 після останньої обробки метформіном або водою, мишей піддавали гострому впливу О3 [2 частини на мільйон (проміле) протягом 3 год] і досліджували подальшу запальну реакцію.

МАТЕРІАЛИ І МЕТОДИ

Тварини.

Це дослідження було схвалено Постійним комітетом з тварин Гарвардського медичного округу. Повних самок мишей db/db та ob/ob було придбано в лабораторії Джексона (Бар-Харбор, штат Мен). Оскільки ці миші знаходились на тлі C57BL/6J, мишами C57BL/6J з диким типом та віком відповідали як контролі. Обидва типи мишей є гіперфагічними, гіпометаболічними, гіперінсулінемічними, гіперглікемічними та масово ожиріними (37). Щоб підтвердити ефективність лікування метформіном щодо сироваткової глюкози, ми використовували як мишей ob/ob, так і db/db. Для всіх інших експериментів ми використовували лише db/db мишей.

Протокол.

Повним і худорлявим мишам вводили або воду, або метформін (300 мкг/г), щодня проводячи зонд протягом 2 тижнів. Інші повідомляють про зменшення рівня глюкози в крові натще у мишей db/db з подібним протоколом лікування (17, 18). Було використано три когорти. В одній когорті після останньої обробки мишей ob/ob та db/db голодували протягом ночі для вимірювання рівня глюкози в крові натще, використовуючи глюкометр Prestige Smart System IQ (Home Diagnostics, Форт-Лодердейл, Флорида) (4 метформін- та 4 миші, оброблені водою). У другій когорті, через 24 години після останньої обробки, мишей знеболювали для вимірювання реакції дихальних шляхів, після чого брали сироватку для оцінки системного запалення (n = 6–8 мишей на групу). Зверніть увагу, що нам не вдалося провести катетеризацію вени для доставки метахоліну в однієї миші, але ми все-таки зібрали зразок крові шляхом серцевої пункції у цієї миші. В останній когорті мишей піддавали дії О3 (2 ppm протягом 3 год) через 24 години після останньої обробки соновим втручанням. Через чотири години після впливу мишей евтаназували та провели бронхоальвеолярний лаваж (BAL) (n = 5–6 мишей/група).

Експозиція O3.

Пробуджених мишей без обмежень поміщали в окремі клітини з дротяної сітки всередину камери експонування з нержавіючої сталі та оргскла і піддавали впливу O3 (2 ppm протягом 3 годин), як описано раніше (29, 66). Протокол експозиції O3 був обраний для порівняння з даними інших дослідників, які вивчали гостре запалення, викликане O3, у мишей (5, 6, 25, 27, 49, 56, 72), включаючи мишей db/db (41). Ця концентрація вища, ніж типова концентрація, яка використовується для впливу на людину. Однак інгаляційна доза O3 є продуктом не лише концентрації озону та часу впливу, але й хвилинної вентиляції (75). Вплив на людину, як правило, проводиться із суб’єктами, які займаються фізичними вправами, щоб збільшити хвилину вентиляції. На відміну від цього, миші зазнають глибокого зниження метаболізму під впливом O3, а при 2 ppm O3 їх хвилинна вентиляція зменшується до значень лише на третину від вимірюваних до впливу (64). Отже, хоча концентрації, що використовуються для досліджень на людях та мишах, можуть суттєво відрізнятися, фактична доза вдиху озону, швидше за все, набагато порівнянніша.

Легенева механіка.

Не експонованих мишей знеболювали ксилазином (7 мг/кг) та пентобарбіталом натрію (50 мг/кг). Трахею канюлювали за допомогою трубного адаптера, а хвостову вену канюлювали для доставки ацетил-β-метилхоліну хлориду (метахолін; Sigma-Aldrich, Сент-Луїс, Міссурі). Мишей провітрювали за допомогою спеціалізованого вентилятора (flexiVent; SCIREQ, Монреаль, КК, Канада). Частоту встановлювали на рівні 150 Гц та 180 Гц у мишей дикого типу та db/db відповідно. Для мишей db/db було вибрано дещо вищу частоту, оскільки ці миші спонтанно дихають з більшою частотою, але приблизно таким самим дихальним об'ємом, як миші дикого типу (41). Отже, дихальний об'єм встановлено на рівні 0,3 мл для обох штамів. З кожного боку грудної стінки було зроблено велике вікно, відрізавши частину деяких ребер і тканини між ними. Таким чином, легені в основному піддавалися атмосферному тиску, і зроблені вимірювання зменшували будь-який внесок грудної стінки в легеневу механіку. Позитивний тиск на кінці видиху 3 смH2O застосовували, помістивши лінію видиху під воду.

Ми та інші повідомляли, що реальні та уявні частини ZL як функція частоти добре відповідають цій моделі в цьому діапазоні частот (24, 53, 54).

Бронхоальвеолярний промивання.

Через чотири години після припинення впливу О3 мишей евтаназували передозуванням пентобарбіталу натрію. Трахею канюлювали і легені двічі промивали 1 мл PBS/0,6 мМ EDTA. BAL центрифугували, а загальну кількість клітин і диференціалів BAL оцінювали, як описано раніше (28–30, 32). Супернатант BAL заморожували при -80 ° C, а потім аналізували на наявність хемокінів, отриманих кератиноцитами (KC), запального білка 2 макрофагів (MIP-2), індукованого інтерфероном білка 10 (IP-10), індукованого LPS хемокіну CXC (LIX) ) та білок хемоаттрактантів моноцитів 1 (MCP-1), використовуючи набори імуноферментного аналізу DuoSet (ELISA) (R&D Systems, Міннеаполіс, Міннесота). Ці хемотаксичні фактори нейтрофілів були обрані тому, що вони характерні для гострого впливу О3 та тому, що, як повідомляється, вони сприяють припливу нейтрофілів, який супроводжує гостре окислення О3 у мишей (14, 29, 32, 33, 41, 45, 66, 71 ). Важливо, що за наявності гіперглікемії інші гострі запальні подразники також призводять до більшої індукції багатьох з цих хемокінів (19).

Маркери системного запалення.

Зразки крові отримували шляхом серцевої пункції, виділяли сироватку і зберігали при -20 ° C до аналізу методом ІФА на MCP-1, лептин та адипонектин (R&D Systems). Оскільки вплив O3 як таке може змінити ці фактори, аналізи проводили лише на сироватці мишей, що використовувалась у механічних дослідженнях.

Статистичний аналіз.

Значення є середніми ± SE. Вимірювання проводили через 24 години після останньої обробки сонометра. RL, резистентність легенів; Сирий, опір дихальних шляхів; G, коефіцієнт затухання легеневої тканини; H, коефіцієнт еластичності легеневої тканини.

Вимірювання реакції дихальних шляхів на метахолін проводили у мишей, які не зазнавали впливу О3, і показані на рис. 1. Метахолін спричиняв набагато суттєвіше підвищення рівня РЛ у дб/дб, ніж у мишей дикого типу (рис. 1А). Локусом цього посиленого ефекту метахоліну у мишей db/db, швидше за все, є дихальні шляхи, а не тканини легенів: спостерігалося приблизно приблизно в 10 разів збільшення сировини після введення найвищої концентрації метахоліну у мишей db/db (рис. . 1B), тоді як G збільшився лише мінімально (рис. 1C). Параметр G пов'язаний з опором легеневих тканин, хоча неоднорідне звуження дихальних шляхів може впливати на вимірювання G без будь-якої фактичної зміни властивостей легеневої тканини (42) і може пояснювати незначні зміни G, що спостерігаються (рис. 1С). Індукованої метахоліном зміни H не було (дані не наведені), що узгоджується з попередніми повідомленнями як у мишей дикого типу, так і у людей із ожирінням (31, 32, 54), і вказує на те, що метахолін у мишей не впливає на еластичність легеневої тканини будь-якого генотипу. Вроджений AHR, який спостерігається у мишей ob/ob, жирів Cpe та мишей з ожирінням, спричиненим дієтою, також є результатом посилення дихальних шляхів, а не реакцій тканин (31, 32, 66).

Зміни загальної легеневої резистентності (RL) (A), резистентності дихальних шляхів (Raw) (B) та коефіцієнта загасання легеневої тканини (G) (C), індукованого внутрішньовенним введенням метахоліну у мишей дикого типу (WT) та db/db . Мишей обробляли промиванням водою або метформіном один раз на день протягом 2 тижнів. Вимірювання проводили через 24 години після останньої обробки. Результати є середніми ± SE даних 6–7 мишей у кожній групі. * P Рис. 2). (Зверніть увагу, що нейтрофіли практично відсутні в BAL мишей дикого типу та db/db, які використовувались у механічному дослідженні і не піддавались дії O3.) Існувала тенденція до збільшення нейтрофілів BAL у легенях метформіну проти обробленої водою мишей незалежно від штаму, але це не досягло статистичної значущості (Р = 0,09). Не було значного впливу штаму або лікування на будь-який інший тип клітин BAL.

Сироватка MCP-1 (A), лептин (B) та адипонектин (C) у мишей без експозиції WT та db/db, яких обробляли метформіном або водою щодня протягом 2 тижнів. Результати є середніми ± SE даних для 6–8 мишей на групу. * P Рис. 1). Однак, хоча метформін суттєво знижував гіперглікемію натще у цих мишей, він не змінював їх вроджену AHR (рис. 1). Результати дозволяють припустити, що деякі аспекти фенотипу цих ожирених мишей, крім гіперглікемії, обумовлюють їх рівень AHR, хоча цілком можливо, що навіть помірне підвищення рівня глюкози в крові, таке, яке залишалося у мишей db/db натще, які отримували метформін, може AHR.

Таким чином, наші дані вказують на те, що 1) вроджений AHR та 2) посилений приплив нейтрофілів, індукований O3, та експресія хемокінів спостерігаються у мишей із ожирінням. Ці відмінності, пов’язані з ожирінням, не зменшувались лікуванням метформіном, незважаючи на зменшення рівня глюкози в крові натще, що свідчить про те, що гіперглікемія навряд чи враховує легеневий фенотип цих мишей із ожирінням.

ГРАНТИ

Це дослідження було підтримано Національним інститутом наук про здоров'я навколишнього середовища ES-013307 та ES-00002, Національним інститутом серця, легенів та крові HL-084044 та HL-33009, а також щедрим подарунком від Пола та Мері Фіннеган.