Інгібітор Mdm2 Nutlin-3a індукує опосередкований p53 апоптоз за допомогою транскрипційно залежних та незалежних від транскрипції механізмів і може подолати опосередковану Atm резистентність до флударабіну при хронічному лімфолейкозі

  • Розділений екран
  • Поділитися піктограмою Поділіться
    • Facebook
    • Twitter
    • LinkedIn
    • Електронна пошта
  • Значок Інструменти Інструменти
    • Кенсуке Кодзіма, Марина Коноплева, Тереза ​​Маккуїн, Сьюзен О'Брайен, Вільям Планкетт, Майкл Андріфф; Інгібітор Mdm2 Nutlin-3a індукує опосередкований p53 апоптоз за допомогою транскрипційно-залежних та незалежних від транскрипції механізмів і може подолати опосередковану Atm резистентність до флударабіну при хронічному лімфолейкозі. Кров 2006; 108 (3): 993–1000. doi: https://doi.org/10.1182/blood-2005-12-5148

      р53-опосередкований

      Завантажити файл цитування:

      Анотація

      Вступ

      В-клітинний хронічний лімфолейкоз (ХЛЛ) становить 25% усіх лейкозів і є найпоширенішою формою лімфоїдної злоякісності в західних країнах. 1 Показано, що лікування пуриновим аналогом флударабіном, який на сьогодні є стандартною терапією ХЛЛ, збільшує загальну частоту ремісій, покращує виживання без прогресування та збільшує середню тривалість клінічної відповіді, але не виживаність у пацієнтів, які раніше не лікувались. з ХЛЛ, порівняно з лікуванням окремим хлорамбуцилом або комбінованою хіміотерапією. 2-4 Хоча введення комбінованих схем на основі флударабіну покращило загальний успіх лікування ХЛЛ, виявлення нових методів лікування ХЛЛ залишається пріоритетним.

      ХЛЛ характеризується накопиченням довгоживучих CD5 + B лімфоцитів, які виявляють стійкість до апоптозу. Трифосфат флударабіну включається в ДНК спокійних клітин ХЛЛ під час відновлення синтезу ДНК і викликає пошкодження ДНК. 7-9 Розриви ланцюга ДНК можуть призвести до активації p53 та p53-залежних генів-мішеней, 10,11, і припускають, що p53-опосередкована індукція апоптозу в основному сприяє вбиванню флударабіном клітин CLL in vivo. 11,12 Також повідомлялося, що флударабін може викликати апоптоз клітин ХЛЛ in vitro незалежно від p53, 13,14, хоча значення in vivo залишається невідомим. 11,12 Клінічно наявність мутацій p53 у клітинах ХЛЛ пов’язано зі зниженням виживання та стійкості до лікування флударабіном. 15-17

      У цьому дослідженні ми досліджували потенційне терапевтичне використання активації р53 антагоністами Mdm2 при ХЛЛ. Ми виявили, що (1) інгібування Mdm2 ефективно індукує опосередкований p53 апоптоз у клітинах CLL, незалежно від рівнів експресії Mdm2 або Atm, (2) залежний від транскрипції апоптоз не завжди може бути основним способом, за допомогою якого p53 індукує апоптоз, і що виключна активація незалежний від транскрипції шлях може повністю індукувати апоптоз; (3) нутлін-3а та флударабін синергічно індукують опосередкований р53 апоптоз у клітинах ХЛЛ, що може подолати резистентність до флударабіну при ХЛЛ.

      Матеріали і методи

      Реагенти

      Селективний маломолекулярний антагоніст MDM2, Nutlin-3a (люб’язно наданий доктором Любомиром Т. Васильовим, Hoffmann-La Roche, Nutley, NJ), 27 та 9-β-d -арабінофуранозил-2-фтороаденином (F-ара- A, флударабін). У деяких експериментах клітини культивували з 3,5 мкМ циклогексиміду (Sigma-Aldrich, Сент-Луїс, Міссурі) або 200 мкМ Z-VAD-FMK (Alexis, Сан-Дієго, Каліфорнія). Циклогексимід та Z-VAD-FMK додавали до клітин за 1 годину до введення препарату. Кінцева концентрація диметилсульфоксиду (ДМСО) у середовищі не перевищувала 0,1% (об./Об.). При цій концентрації сам ДМСО не викликав апоптозу до 72 годин у первинних клітинах ХЛЛ.

      Первинні зразки та культури клітин

      Гепаринізовані зразки периферичної крові отримували у раніше нелікованих хворих на ХЛЛ із понад 70% злоякісних клітин після інформованої згоди, відповідно до інституційних рекомендацій та Гельсінкської декларації. Одноядерні клітини очищали центрифугуванням з градієнтом щільності Ficoll-Hypaque (Sigma Chemical, Сент-Луїс, Міссурі), а неадгезивні клітини ресуспендували в середовищі RPMI 1640, доповненому 10% FCS при щільності 5 × 10 5 клітин/мл. Клітини обробляли Nutlin-3a або F-ara-A, як при 1, 2,5, 5 або 10 мкМ, і інкубували протягом 72 годин при 37 ° C і 5% CO2 у зволоженій атмосфері. У комбінованих експериментах Нутлін-3а та F-ара-А 2 агенти одночасно додавали до клітин із співвідношенням фіксованої концентрації (1: 1) і клітини інкубували протягом 72 годин.

      Аналіз апоптозу

      Оцінку апоптозу аналізом зв’язування анексину V – пропідій йодид (ПІ) проводили, як описано. 28 Ступінь апоптозу визначали кількісно як відсоток V-позитивних клітин анексину, а ступінь лікарсько-специфічного апоптозу оцінювали за такою формулою: відсоток специфічного апоптозу = (тест - контроль) × 100/(100 - контроль). У формулі чисельник - це фактична кількість вбивств, що сталися, а знаменник - потенційна кількість вбивств, яка могла статися. Для вимірювання мітохондріального мембранного потенціалу (ΨΨm) клітини завантажували MitoTracker Red CMXRos (300 нМ) та MitoTracker Green (100 мкМ; обидва з Molecular Probes, Eugene, OR) протягом 1 години при 37 ° C. Потім ΔΨm оцінювали, вимірюючи утримання CMXRos (червона флуоресценція), одночасно коригуючи мітохондріальну масу (зелена флуоресценція).

      Вестерн-блот-аналіз

      Вестерн-блот-аналіз проводили, як описано раніше. 28 Були використані такі антитіла: кролячий поліклональний анти-p53 (FL-393; Санта-Крус Біотехнологія, Санта-Крус, Каліфорнія); мишачий моноклональний антифосфо-p53 (Ser 15, 16G8; Технологія сигналізації клітин, Беверлі, Массачусетс); мишачий моноклональний анти-Mdm2 (D-12; Санта Круз Біотехнологія); кролик поліклональний анти-Пума (Ab-1; EMD Biosciences, Сан-Дієго, Каліфорнія); кролик поліклональний анти-Бакс (BD Biosciences, Сан-Хосе, Каліфорнія); кролик поліклональний анти-Атм (Ab-3; Oncogene Research, Кембридж, Массачусетс); та моноклональний анти-β-актин миші (AC-74; Sigma Chemical).

      Кількість внутрішньоклітинного білка методом проточної цитометрії

      Для внутрішньоклітинного виявлення p53 клітини фіксували 2% параформальдегідом, просочували 100% холодним метанолом і інкубували протягом 1 години при 4 ° C з кон’югованим флуоресцеїном ізотіоціанатом (FITC) кон’югованим антитілом проти p53 або його ізотипним контролем (кон’югований FITC) набір реагентів для антитіл р53; BD Biosciences). Залучення конформаційних змін Bax аналізували за допомогою антитіла, спрямованого проти NH2-кінцевої області Bax (YTH-6A7; Trevigen, Gaithersburg, MD). 31 Клітинна фіксація, пермеабілізація та фарбування первинними антитілами або ізотипний контроль проводились за допомогою набору Dako IntraStain (Dako Cytomation, Carpinteria, CA), відповідно до інструкцій виробника. Після промивання клітини інкубували з курячими протимишачими антитілами Alexa Fluor 488 (молекулярні зонди) протягом 30 хвилин при 4 ° C.

      Імунофлуоресценція та конфокальна мікроскопія

      Імунофлуоресценцію та конфокальне мікроскопічне дослідження проводили, як описано раніше, 28 з незначними змінами. Клітини двічі промивали PBS, фіксували 2% параформальдегідом і просочували крижаним 100% метанолом. Клітини блокували у 5% нормальній козячій сироватці протягом 30 хвилин, після чого проводили інкубацію протягом ночі при 4 ° C з кролячими поліклональними антитілами проти p53 FL-393 (1: 100 об./Об.; Санта Круз Біотехнологія) та мишачим моноклональним антицитохромом c оксидаза IV (10G8, 1 мкг/мл; Молекулярні зонди). Після промивання клітини інкубували з курячим антиграбітовим вторинним антитілом Alexa Fluor 488 та вторинним антитілом до курячого протимиша Alexa Fluor 594 (молекулярні зонди), розведеним у 5% нормальній козячій сироватці протягом 30 хвилин при 4 ° C. Ядра були забарвлені DAPI (4 ', 6-діамідино-2-феніліндол). Зображення отримували за допомогою об’єктива PlanApo 60 ×/1,40 на конфокальному мікроскопі Olympus FV500 із програмним забезпеченням Fluoview версії 4.3 (Olympus, Melville, NY).

      Ланцюгова реакція зворотної транскрипції – полімерази (RT-PCR) та секвенування ДНК p53

      На основі низької частоти мутації p53 та повідомленої асоціації між статусом p53 та реакцією клітин на нутліни, було проведено 27,28,32 аналіз послідовності p53 у випадках, стійких до нутлінів, та у деяких випадках, чутливих до нутлінів. Методологія була описана раніше. 28

      Статистичний аналіз

      Статистичний аналіз проводили за допомогою 2-хвостового t-критерію Стьюдента та коефіцієнта кореляції Пірсона. Статистичну значимість розглядали, коли значення P були меншими за 0,05. Якщо не вказано інше, середні значення виражали як середнє значення плюс-мінус SEM. Синергізм, адитивні ефекти та антагонізм оцінювали, як описано раніше. 28 Індекс комбінації (CI), числовий опис комбінованих ефектів, був розрахований із застосуванням більш суворого статистичного припущення про взаємно невиключні способи дії. Коли CI = 1, це рівняння представляє збереження ізоболограми та вказує на адитивні ефекти. Значення CI менше 1,0 вказують на адитивний ефект (синергізм), що перевищує очікуваний, тоді як значення CI більше 1,0 вказують на антагонізм між двома препаратами.

      Результати

      Нутлін-3а індукує апоптоз, який посилюється поєднанням з F-ара-А, у клітинах ХЛЛ

      Характеристика пацієнта

      Кількість пацієнтів 33
      Середній вік, у (діапазон) 60 (42-80)
      Стать, чоловік/жінка, ні. пацієнтів 21/12
      Райські етапи, немає. пацієнтів
      Від 0 до II 28
      З III по IV 5
      Кількість пацієнтів 33
      Середній вік, у (діапазон) 60 (42-80)
      Стать, чоловік/жінка, ні. пацієнтів 21/12
      Райські етапи, немає. пацієнтів
      Від 0 до II 28
      З III по IV 5

      Обробка первинних зразків ХЛЛ Нутліном-3а або F-ара-А викликає залежний від дози та часу апоптоз, і їх поєднання виявляє синергетичні ефекти. Клітини з 30 зразків, чутливих до нутлінів, інкубували із зазначеними концентраціями Nutlin-3a або F-ara-A, а фракції V-позитивних анексину вимірювали за допомогою проточної цитометрії через 24 та 72 години. Результати виражаються як середнє значення ± SEM.

      Обробка первинних зразків ХЛЛ Нутліном-3а або F-ара-А викликає залежний від дози та часу апоптоз, і їх поєднання виявляє синергетичні ефекти. Клітини з 30 зразків, чутливих до нутлінів, інкубували із зазначеними концентраціями Nutlin-3a або F-ara-A, а фракції V-позитивних анексину вимірювали за допомогою проточної цитометрії через 24 та 72 години. Результати виражаються як середнє значення ± SEM.

      Значення комбінованого індексу для апоптотичних ефектів F-ara-A та Nutlin-3a

      . ED50 . ED75 . ED90 . Середній Cl* .
      О 24 год 0,50 0,63 0,82 0,65
      Через 72 год 0,36 0,66 1.39 0,81
      . ED50 . ED75 . ED90 . Середній Cl* .
      О 24 год 0,50 0,63 0,82 0,65
      Через 72 год 0,36 0,66 1.39 0,81

      Середні значення індексу комбінації (Cl) розраховували на основі ED50, ED75 та ED90.

      Рання стадія індукції апоптозу F-ara-A у клітинах ХЛЛ in vitro залежить від p53

      Було показано, що флударабін залежить від опосередкованої р53 індукції апоптозу через його цитотоксичність in vivo, проте ступінь внеску сигналу р53 у загальний апоптотичний потенціал флударабіну in vitro залишається невідомим. 11-14 Ми корелювали ступінь апоптозу, індукованого 1, 2,5, 5 або 10 мкМ Nutlin-3a, з рівнем індукованого тією ж молярною концентрацією F-ара-А. Рівні апоптозу, індукованого F-ara-A, безпосередньо корелювали (r = 0,811; P 27,28 різноманітна сприйнятливість клітинних зразків до індукованого нутліном апоптозу та р53-незалежна апоптогенна активність F-ara-A через 72 години в мутантних p53 випадків, здається ймовірним, що F-ara-A в першу чергу індукує p53-залежний апоптоз протягом перших 24 годин, а пізніше виявляє p53-залежну та p53-незалежну активність.

      Позитивна кореляція індукованого Nutlin-3a– та F-ara-A апоптозу у зразках пацієнтів з ХЛЛ. Ступінь апоптозу, індукованого 1, 2,5, 5 або 10 мкМ Nutlin-3a, корелювала з рівнем індукованої тією ж молярною концентрацією F-ara-A у 30 зразках, чутливих до нутлінів.

      Позитивна кореляція індукованого Nutlin-3a– та F-ara-A апоптозу у зразках пацієнтів з ХЛЛ. Ступінь апоптозу, індукованого 1, 2,5, 5 або 10 мкМ Nutlin-3a, корелювала з рівнем індукованої тією ж молярною концентрацією F-ara-A у 30 зразках, чутливих до нутлінів.

      Нутлін-3а та F-ара-А синергічно індукують p53 та активують Bax

      Індукція p53-пов’язаних білків F-ara-A та Nutlin-3a у зразку ХЛЛ із p53 дикого типу. Зразок містив більше 95% CD5 + CD19 + клітин із нормальним рівнем Atm. Клітини обробляли 5 мкМ F-ара-A (F) та 5 мкМ Nutlin-3a (3a) або як окремі агенти, або в комбінації, протягом зазначеного часу. F-ara-A індукував фосфорилювання p53 на Ser 15, а потім накопичення p53 та індукцію Puma. Нутлін-3а індукував негайне накопичення р53, який в основному не містить фосфорилювання на Ser 15, а потім індукцію Mdm2 та Puma. Ступінь індукції Пуми ще більше підвищувався в клітинах, оброблених F-ара-А та Нутлін-3а. β-актин використовується для підтвердження рівного завантаження білків. Лізат з клітин до лікування служив контролем (C).

      Індукція p53-пов’язаних білків F-ara-A та Nutlin-3a у зразку ХЛЛ із p53 дикого типу. Зразок містив більше 95% CD5 + CD19 + клітин із нормальним рівнем Atm. Клітини обробляли 5 мкМ F-ара-A (F) та 5 мкМ Nutlin-3a (3a) або як окремі агенти, або в комбінації, протягом зазначеного часу. F-ara-A індукував фосфорилювання p53 на Ser 15, а потім накопичення p53 та індукцію Puma. Нутлін-3а індукував негайне накопичення р53, який в основному не містить фосфорилювання на Ser 15, а потім індукція Mdm2 та Puma. Ступінь індукції Пуми ще більше підвищувався в клітинах, оброблених F-ара-А та Нутлін-3а. β-актин використовується для підтвердження рівного завантаження білків. Лізат з клітин до лікування служив контролем (C).

      Як залежні від транскрипції, так і незалежні від транскрипції шляхи апоптозу функціонують при р53-залежному апоптозі при ХЛЛ

      Інгібітор Mdm2 індукує апоптоз незалежно від стану Mdm2 або Atm

      Синергізм між Нутліном-3а та F-ара-А зберігається у випадках низького рівня атм. Результати аналізу V-зв'язування анексину у 30 зразках, чутливих до нутлінів (рис. 1), аналізували окремо з урахуванням рівнів експресії Atm. Клітини інкубували із зазначеними концентраціями Нутлін-3а або F-ара-А, а фракції V-позитивного складу анексину вимірювали за допомогою проточної цитометрії через 24 години. Результати виражаються як середнє значення ± SEM. □ позначає Нутлін-3а; ▦, F-ара-А; та ▪, комбінація.

      Синергізм між Нутліном-3а та F-ара-А зберігається у випадках низького рівня атм. Результати аналізу V-зв'язування анексину у 30 зразках, чутливих до нутлінів (рис. 1), аналізували окремо з урахуванням рівнів експресії Atm. Клітини інкубували із зазначеними концентраціями Нутлін-3а або F-ара-А, а фракції V-позитивного складу анексину вимірювали за допомогою проточної цитометрії через 24 години. Результати виражаються як середнє значення ± SEM. □ позначає Нутлін-3а; ▦, F-ара-А; та ▪, комбінація.

      Ефективність комбінованого лікування Нутліном-3а та F-ара-А не залежить від випадків низького рівня атм

      Щоб визначити, чи підтримується синергетичний апоптотичний ефект комбінації Nutlin-3a та F-ara-A, показаний на малюнку 1, у випадках із низьким рівнем атмосфери, дані за 24 години з 30 зразків, чутливих до нутлінів, були проаналізовані окремо між випадками з низьким рівнем атмосфери (n = 5) та з високим Atm (n = 25). Як показано на малюнку 7, усереднені значення ДІ були подібними між випадками з низьким рівнем Atm (0,44) та тими, що мали високий рівень Atm (0,69), що свідчить про те, що Nutlin-3a та F-ara-A діють синергетично для індукції апоптозу в клітинах CLL незалежно від ATM статус. Ми також з'ясували, чи може комбінований ефект відрізнятися між випадками, коли Нутлін-3а індукує незалежний від транскрипції апоптоз, та випадками з переважанням залежного від транскрипції апоптозу. Середні значення ДІ за 24 години в незалежних від транскрипції та залежних від транскрипції групах становили 0,54 та 0,78 відповідно. Виявилося, що синергізм аналогічно підтримувався в обох підгрупах.

      Обговорення

      Ми виявили, що флударабін використовує р53-залежний та р53-незалежний механізми для індукування апоптозу клітин ХЛЛ в залежності від часу. Флударабін індукує р53-залежний апоптоз у ранній період часу (11,12. Цікавим було те, що Nutlin-3a та F-ara-A синергетично індукували апоптоз у клітинах ХЛЛ. Синергізм виявився через 24 години лікування, коли F-ара- Використовуваний p53-залежний механізм для індукування апоптозу. Комбіноване лікування клітин Nutlin-3a та F-ara-A, кооперативно індуковане p53 та Bax конформаційні зміни в p53 дикого типу, але не в мутантних p53 клітинах, додатково підтверджуючи важливість p53 Ми також виявили, що синергічна взаємодія між Нутліном-3а та F-ара-А при індукуванні р53 та апоптозу зберігалася у випадках з низьким рівнем Атм, забезпечуючи подальше обгрунтування цієї комбінованої стратегії при лікуванні ХЛЛ, що зберігає p53 дикого типу.

      Попередньо опубліковано в Інтернеті як Paper First Edition Paper, 16 березня 2006 р .; DOI 10.1182/кров-2005-12-5148.

      Частково за підтримки грантів Національних інститутів охорони здоров’я (AML-PO1) CA55164, CA49639, CA89346 та CA16672, кафедри Пола та Мері Хаас з генетики (MA) та Фонду Канае за життя та соціально-медичні науки (2004) ), Меморіальний фонд медичних та фармацевтичних досліджень Мочіди (2004) та Меморіальний фонд Уехара (2004) (КК).

      Витрати на публікацію цієї статті були частково компенсовані оплатою сторінки. Отже, і лише для зазначення цього факту, ця стаття цим позначається як „реклама” відповідно до 18 U.S.C. розділ 1734.

      Доктор Любомир Т. Васильєв із "Гофманн-Ла-Рош" (Натлі, Нью-Джерсі) щедро надав "Натлін-3а". Автори вдячні пані Розмарі Б. Лоузон та пані Леслі Р. Калверт з Департаменту трансплантації крові та мозку Техаського університету Центру раку М. Д. Андерсона за їх допомогу.