Вплив підкиснення раціону на курчат-бройлерів: 1. Ефективність росту та перетравність поживних речовин

Папір

  • Повна стаття
  • Цифри та дані
  • Список літератури
  • Цитати
  • Метрики
  • Ліцензування
  • Передруки та дозволи
  • PDF

Анотація

Був проведений експеримент для оцінки впливу дієтичних добавок Оргациди ® (органічна кислота; ОА) на продуктивність, перетравність клубової порожнини поживних речовин, відносну вагу органів та активність ферментів сироватки у курчат-бройлерів. Сто шістдесят курчат-самців Росс 308 були випадковим чином розподілені на 4 дієтичні процедури: збалансована з поживою базальна дієта, доповнена 0, 1, 2 і 3 ОА г кг –1 корму у віці від 7 до 42 днів. Кожна обробка мала 4 повторення з 10 бройлерами/копією перо. В результаті цього дослідження збільшилась маса тіла, середньодобовий приріст та середньодобове споживання корму (лінійний ефект, Р –1 включення ОА, тоді як на коефіцієнт конверсії корму негативно впливали дієтичні методи лікування (квадратичне, Р -1, а потім зменшувались із подальше включення. Підвищена перетравність загального фосфору та відносна вага підшлункової залози, серця та селезінки (лінійний ефект, дієта Р – 1. Результати показали, що в сироватці крові підвищується активність лужної фосфатази та аланінамінотрансферази (лінійний ефект, Р – 1 дієта призвела до оптимальних показників росту та засвоюваності поживних речовин.

ефект

Вступ

Отже, основною метою цього дослідження було дослідити вплив доповнення дієт ОА на середньодобовий приріст (ADG), середньодобове споживання корму (ADFI) та коефіцієнт конверсії корму (FCR). Крім того, вихід туші, відносна вага підшлункової залози, печінки, серця, селезінки та бурси, ферментативна активність лужної фосфатази (ALP), аспартатамінотрансферази (AST), аланінамінотрансферази (ALT) та лактатдегідрогенази (LDH), засвоюваність сировини вимірювали білок (CP), видиму енергію метаболізму, скориговану на нульове утримання азоту (AMEn), Ca та загальний фосфор (tP) курчат-бройлерів.

Матеріали і методи

Експериментальні птахи та дієти

Протоколи лікування та процедури у цьому дослідженні проводились відповідно до місцевих етичних рекомендацій та були затверджені Комітетом з етики тварин при Дослідницькій раді Університету Бірджанд, Бірджанд, Іран.

Сто шістдесят курчат-бройлерів-самців штаму Росс були отримані з комерційного інкубаторію та використані в цьому експерименті, який тривав 35 днів. Загалом 4 процедури повторювали 4 рази, по 10 птахів (47,5 ± 0,5 г) на перо (0,9 × 1,2 × 0,7 м). Період експерименту був розділений на 2 фази: фазу вирощування (7-21 д) та фазу доробки (22-42 д). Базові дієти для обох фаз були сформульовані таким чином, щоб відповідати або перевищувати всі рекомендації щодо поживних речовин, опубліковані в рекомендаціях Росса щодо вирощування (Таблиця 1; Aviagen, 2011). Для приготування решти експериментальних дієт базальну дієту доповнювали добавкою ОА (Orgacids ®; Sunzen Biotech, Селангор, Малайзія) на рівнях 0, 1, 2 та 3 г кг –1. Orgacids ® - це комбінація шести кислот, які змішуються в дрібнозернистий носій (мурашина кислота, молочна кислота, яблучна кислота, винна кислота, лимонна кислота та ортофосфорна кислота).

Щоб дієти були ізокалорійними, OA додавали до основних дієт замість кукурудзяного крохмалю. Всі експериментальні дієти не містили антибіотиків і пропонувались у вигляді каші. Всіх пташенят годували типовим комерційним раціоном для початківців бройлерів протягом перших 6 днів до початку експерименту. Експериментальну дієту пропонували птахам віком від 7 років (BW = 121 г ± 1; P> 0,05). Птахи мали вільний доступ до корму та води.

експериментальна процедура

Значення BW та споживання корму для кожної клітки визначали після відбору корму протягом 3 год перед зважуванням на d 7, 21 та 42. ADG, ADFI та FCR розраховували для кожної фази. Мертвих птахів зважували і реєстрували щодня. При розрахунку FCR враховували масу тіла загиблих птахів.

У 30-річному віці оксид титану (1 г/кг дієти) додавали до всіх дієт протягом п’яти днів і використовували як аналітичний маркер для визначення впливу процедур на засвоюваність сирого білка (СР), очевидної енергії, що метаболізується з поправкою на нульове утримання азоту (AMEn), кальцію (Ca) та загального фосфору (tP). У 35-річному віці трьох птахів на репліку (12 пташенят на обробку) випадковим чином брали, зважували, вбивали та обробляли вручну для збору вмісту клубової кишки, негайно заморожували та зберігали при –20 ° C до необхідності для визначення очевидного утримання поживних речовин. Подвздошная кишка була визначена як сегмент тонкої кишки, який простягався від дивертикула Меккеля до 40 мм проксимальніше клубово-сліпої кишки. У віці 42 днів двох випадково вибраних птахів на одну копію (8 птахів на обробку) було випадковим чином відібрано та електрично оглушено, а потім забито шляхом перерізу яремних вен і сонних артерій, оброблено вручну та зроблено колекції після 4-годинного голодування. Тушку, підшлункову залозу, печінку, серце, бурсу та селезінку збирали, зважували та виражали відносно загальної маси тіла (г/100 г т. Д.).

У віці 42-го дня у двох вбитих птахів у негепаринізованих пробірках відбирали 5 мл крові і тримали на крижаному льоду, поки їх не піддавали збору сироватки шляхом центрифугування цілої проби крові при 2500 г протягом 10 хв. Зразки сироватки аналізували на активність лужної фосфатази (ALP, EC 3.1.3.1), аланінамінотрансферази (ALT, EC 2.6.1.2), аспартатамінотрансферази (AST, EC 2.6.1.1) та лактатдегідрогенази (LDH, EC 1.1.1.27) за допомогою автоматизованого аналізатора клінічної хімії Express Plus (Ciba-Corning Diagnostics Corp., Medfield, MA) відповідно до вказівок виробника (Nagel та ін., 1964).

Приготування зразків та хімічні аналізи

Зразки клубової кишки ліофільно висушені і тонко подрібнені в подрібнювачі (CBG5 Smart Grind, Applica Consumer Products Inc., Shelton, CT), щоб пройти крізь 0,5-міліметровий екран і ретельно перемішали перед аналізом. Зразки дієти аналогічно подрібнювали і ретельно перемішували перед аналізом. Зразки аналізували на валову енергію, сирий білок (N × 6,25), вміст Ca, tP та Ti. Валова енергія визначалася за допомогою адіабатичного калориметра бомби (Gallenkamp Autobomb, Лафборо, Великобританія) та була стандартизована на бензойну кислоту. CP (N × 6,25) визначали методом Кельдаля (Kjeltec 1030 Autoanalyzer, Foss Tecator AB) (AOAC, 1995; метод № 981,10). Зразки для аналізу Са відправляли в золу протягом 12 год і розщеплювали згідно з процедурами AOAC (1990) (метод 990.08) і зчитували на мас-спектрометрі з індуктивно пов'язаною плазмою Varian (Varian Inc.). Загальний Р визначали за допомогою методу AOAC (1990) 965,17. Титан визначали згідно з процедурою, описаною Ломером та ін. (2000) та читання на мас-спектрометрі з плазмовою індукційною зв'язкою Varian (Varian Inc., Пало-Альто, Каліфорнія, США).

Розрахунки та статистичний аналіз

Утримання поживних речовин розраховували за наступним рівнянням (Скотт та ін., 1982):

Явне утримання поживних речовин = 1 - [([TiO2] дієта/[TiO2] екскременти) × ([поживна речовина] екскрети/[поживна речовина] дієта)]. Явна метаболізуюча енергія, скоригована на нульові значення утримання азоту (AMEn), розраховувались шляхом віднімання екскретованого ГЕ (скоригованого до нульового балансу N) із споживання ГЕ та ділення цього значення на споживання корму ДМ. Для корекції до нульового утримання N використовували значення 34,39 кДж g –1 утриманого N (Hill and Anderson, 1958).

Вплив ОА на відносну вагу (г/100 г ТБ) підшлункової залози, печінки, серця, бурси та селезінки представлено в таблиці 3. Не було виявлено суттєвих відмінностей у туші, вилікуваній у різних групах лікування. Включення 3 г кг –1 ОА збільшило відносну вагу серця (лінійне), підшлункової залози та селезінки (лінійне та квадратичне) порівняно зі значеннями для контрольної групи (P 2009). Щоб адаптуватися до цих змін, діяльність секреторних механізмів кишечника може бути посилена. Таким чином, це може призвести до збільшення розмірів шлунково-кишкового тракту (ШКТ) та підшлункової залози. Лімфоїдні тканини відіграють важливу роль у захисті організму від мікроорганізмів. Бройлери мають центральну (тимус і бурса) та периферичну (селезінку та всю лімфоїдну тканину, пов’язану зі слизовою оболонкою кишечника) лімфоїдні тканини (Akter та ін., 2006). Більша відносна вага підшлункової залози та селезінки свідчить про те, що бройлери були здоровими та мали вищий імунний статус для боротьби з патогенами та інфекційними захворюваннями (Абдель-Фаттах та ін., 2008). Таким чином, додавання ОА до раціонів підвищувало імунний статус бройлерів.

Добавки ОА суттєво впливали на утримання AMEn і tP (табл. 4). Результати показали, що засвоюваність клубової кишки tP зростала лінійно, тоді як AMEn збільшувалась квадратично (P –1 додатковий OA. Включення добавок OA не мало значного впливу на засвоюваність клубової тканини CP та Ca. Подібно до цього дослідження, Nourmohammadi та ін. (2012) вказували, що додавання ОА до раціону курей-бройлерів підвищує засвоюваність АМЕ. Синку та ін. (2002) вказали, що додавання ОА до раціону бройлерів уповільнює швидкість проходження корму через шлунково-кишковий тракт і що збільшений час травлення покращує корисність поживних речовин у курчат-бройлерів. Включення дієтичного ОА може покращити енергетичну цінність дієт за допомогою різних механізмів. Наприклад, ОА може підкислити вміст шлунково-кишкового тракту, що призводить до підвищення активності травних ферментів (Могадам та ін., 2006). Нурмохаммаді та ін. (2012) повідомляють про позитивні ефекти ОА на засвоюваність тР у бройлерів, що харчуються дієтами на основі кукурудзи та сої. Поліпшення утримання tP може бути зумовлене хелатируючими ефектами OA на Ca, що призводить до підвищеної розчинності фітатів та сприйнятливості до гідролізу, згодом збільшуючи доступність tP у кишечнику (Centeno та ін., 2007).