Комбіноване лікування кверцетином і ресвератролом послаблює ожиріння, спричинене дієтою, і спричинене запалення у щурів через сигнальний шлях AMPKα1/SIRT1.

Ле Чжао

1 Центр терапії китайської медицини та системної біології, Міждисциплінарний науково-дослідний інститут, Шанхайський університет традиційної китайської медицини, Шанхай 201203, Китай

ресвератролом

Fang Cen

1 Центр терапії китайської медицини та системної біології, Міждисциплінарний науково-дослідний інститут, Шанхайський університет традиційної китайської медицини, Шанхай 201203, Китай

Фен Тянь

2 Інститут охорони здоров'я Nutrilite, Шанхай, 201203, Китай

Мін-Цзе Лі

2 Інститут охорони здоров'я Nutrilite, Шанхай, 201203, Китай

Ци Чжан

2 Інститут охорони здоров'я Nutrilite, Шанхай, 201203, Китай

Хун-І Шень

3 Дослідницький центр охорони здоров'я та харчування Школи громадського здоров'я Шанхайського університету традиційної китайської медицини, Шанхай 201203, Китай

Сян-Чун Шень

4 Вища освітня ключова лабораторія в Гуйчжоу з природної лікарської фармакології та відмінність, Школа фармацевтичних наук, Медичний університет Гуйчжоу, Хуасі, Гуйчжоу 550025, Китай

Мін-Мей Чжоу

1 Центр терапії китайської медицини та системної біології, Міждисциплінарний науково-дослідний інститут, Шанхайський університет традиційної китайської медицини, Шанхай 201203, Китай

Червень Ду

2 Інститут охорони здоров'я Nutrilite, Шанхай, 201203, Китай

Анотація

Вступ

Матеріали і методи

Тварини

Біохімічні показники

Загальний холестерин (С), тригліцериди (ТГ), ліпопротеїни високої щільності (ЛПВЩ) і ліпопротеїни низької щільності (ЛПНЩ) у сироватці крові вимірювали та вимірювали за допомогою автоматичного біохімічного аналізатора Hitachi 7600 (Hitachi, Ltd., Токіо, Японія) з відповідними наборами: реагент для аналізу Quick Auto Neo T-CHOLII та реагент для аналізу Quick Auto Neo TGII, вироблений Shino-Test Corporation (Токіо, Японія); L-тип HDL-C реагент 1 (кат. 998-09011), реагент 2 (кат. 994-09111); та реагент LDL-C типу L (кат. № 997-39893) та реагент 2 (кат. № 993-39993), вироблені компанією Wako Pure Chemical Industries, Ltd. (Осака, Японія).

Кількісна оцінка цитокінів

Рівні лептину, адипонектину, інсуліну, інтерлейкіну-6 (IL-6), фактора некрозу пухлини-α (TNF-α) та хемотаксичного білка-1 моноцитів (MCP-1) визначали кількісно, ​​використовуючи відповідні комерційні набори ІФА щурів. наступним чином: лептин для щурів, набір LEP ELISA (кат. № CSB-E07433r); адипонектин для щурів, набір ADP ELISA, (номер кату CSB-E07271r); щурячий інсулін, набір INS ELISA (CSB-E05070r); набір щурів IL-6, IL-6 ELISA (кат. № CSB-E04640r); набір ІФА для щурів TNF-α (кат. № CSB-E11987r); та хемотаксичний та активуючий фактор MCP-1/моноцитів щурів, набір MCP-1/MCAF ELISA (кат. № CSB-E07429r; Cusabio Biotech Co., Ltd., Ухань, Китай) згідно з протоколами виробника.

Гістопатологія

Жирові тканини збирали через 11 тижнів і фіксували у 4% формаліні при кімнатній температурі протягом 24 годин, вкладали у парафін і послідовно нарізали на ділянки товщиною 5 мкм. Для визначення розміру адипоцитів проводили фарбування гематоксиліном та еозином на ЕАТ при кімнатній температурі протягом 30 хв. П’ять полів зору були випадковим чином вибрані з кожного розділу за допомогою світлового мікроскопа Olympus BX51 (Olympus Corporation, Токіо, Японія) та досліджені за допомогою Image-Pro Plus версії 6.0 (Media Cybernetics, Inc., Rockville, MD, USA) для визначення середнього адипоцита діаметр. Фарбування толуїдиновим синім також проводили на ЕАТ протягом 1 години шляхом короткочасного занурення зрізів тканин у 0,1% водний толуїдиновий синій (Sigma-Aldrich; Merck KGaA, Дармштадт, Німеччина) при кімнатній температурі; гістологічні зображення використовували для кількісної оцінки кількості тучних клітин присутній, як описано раніше (15). Кількість тучних клітин підраховували за допомогою світлового мікроскопа і представляли як кількість клітин/мм 2 .

Екстракція білка та Вестерн-блот-аналіз

Статистичний аналіз

Усі дані представлені як середнє значення ± стандартна помилка середнього значення. Для багаторазового порівняння відмінності аналізували за допомогою одностороннього дисперсійного аналізу з подальшим тестом багаторазового порівняння Тукі. P Рис. 1A). Збільшення маси тіла було полегшено за допомогою CQR між 8 та 11 тижнями та після втручання через 11 тижнів; Щури HFD + CQR мали значно нижчу масу тіла, ніж щури HFD (рис. 1А). Споживання їжі було значно нижчим у щурів із HFD порівняно з щурами з інфікованою природою (рис. 1B), однак споживання енергії було значно вищим (рис. 1C). CQR не робив помітного впливу на споживання їжі та енергії. Наприкінці 11 тижня щури HFD + CQR мали помітно меншу масу вісцеральної (епідидимальної та периренальної) жирової тканини (рис. 1D) та значно менший діаметр жирових клітин порівняно з групою HFD (рис. 1E та F). Вага підшкірної жирової тканини суттєво не відрізнявся у всіх групах (рис. 1D). Ці результати свідчать про те, що лікування CQR може інгібувати ожиріння, спричинене HFD.